Общий анализ крови у коровы норма

Аннотация научной статьи по животноводству и молочному делу, автор научной работы — Соболева Е. Н.

В статье представлены результаты наших исследований. Мы изучили и сравнили биохимические и гематологические показатели крови у клинически здоровых коров и коров, больных маститом, в условиях СХПК «Племзавод Майский». Анализ полученных данных показал, что при маститах у коров айрширской породы имеют место функциональные нарушения работы эритроцитов , что необходимо учитывать при комплексной терапии воспалений молочной железы.

Похожие темы научных работ по животноводству и молочному делу , автор научной работы — Соболева Е. Н.

Assessment of the cow at the farm SHPK «’Plemzavod May»

The results of our research. We examined and compared the biochemical and hematological blood parameters in clinically healthy cows and cows with mastitis in SHPK ‘Plemzavod May.’ Analysis of the data showed that mastitis in cows Ayrshire breed there are functional disorders of the red blood cells that must be considered in the treatment of inflammatory breast cancer.

Текст научной работы на тему «Оценка состояния организма коров в хозяйстве СХПК «Племзавод Майский»»

Е.Н. Соболева, соискатель кафедры анатомии и физиологии ФГОУ ВПО Вологодская ГМХА имени Н.В.Верещагина

Оценка состояния организма коров в хозяйстве схпк «племзавод майский»

Аннтоация: В статье представлены результаты наших исследований. Мы изучили и сравнили биохимические и гематологические показатели крови у клинически здоровых коров и коров, больных маститом, в условиях СХПК «Племзавод Майский». Анализ полученных данных показал, что при маститах у коров айршир-ской породы имеют место функциональные нарушения работы эритроцитов, что необходимо учитывать при комплексной терапии воспалений молочной железы.

Ключевые слова: эритроциты, лейкоциты, мастит, лактирующие коровы

Высокая молочная продуктивность вызывает большое напряжение обменных процессов в организме и предъявляет повышенные требования в организации полноценного кормления, содержания животных и ранней диагностике нарушений систем организма.

Основным индикатором, раскрывающим картину метаболизма в организме животных, является кровь. Кровь — важнейшая интегрирующая система, которая обеспечивает обмен метаболитами и информацией между тканями и клетками, пластическую и защитную функции организма. Поэтому всякого рода воздействия на ткани организма отражаются на составе и свойствах крови [3].

Кровь здорового животного имеет достаточно постоянный клеточный состав, поэтому его изменения, которые наступают при разных заболеваниях, имеют очень важное диагностическое значение.

При лабораторных исследованиях крови определяются показатели, указывающие на происходящие в организме изменения, что особенно важно при выявлении отклонений в начальных стадиях заболеваний, когда клинических проявлений ещё нет [2].

Самым информативным и часто применяемым способом исследования кро-

ви является общий анализ крови. С его помощью можно выявить самые ранние признаки болезни. Вторым основным видом анализа крови является биохимический анализ крови. Биохимический анализ крови раскроет полную картину функционирования того или иного органа.

Цель работы — изучить и сравнить биохимические и гематологические показатели крови у клинически здоровых коров и коров, больных маститом, в условиях СХПК «Племзавод Майский».

Материал и методы исследований. Исследования проводили на коровах айрширской породы молочно-товарного комплекса «Майский» СХПК «Племзавод Майский» Вологодского района. Для выполнения поставленной цели нами были выделены две группы животных: контрольная группа (n=10, клинически здоровые животные) и опытная группа (n=7, коровы с воспалением молочной железы).

У животных исследовали кровь гематологическими и биохимическими методами. Общий анализ крови выполняли на автоматическом гематологическом анализаторе BC-3000 PLUS (Китай). Лейкограмму выводили на основании подсчета клеток в мазках, окрашенных по Романовскому — Гимзе [4]. Биохими-

ческие исследования крови проводили на биохимически программируемом фотометре STAT FAX PLUS с проточной кюветой (США).

Полученные результаты обрабатывали при помощи программного пакета Microsoft Excel. Значения полученных результатов представлены в виде M±m

результаты исследований. В

ходе исследования было установлено, что показатели общего анализа крови у коров контрольной группы не выходили за рамки референсных значений, за исключением некоторых эритроцитарных индексов (МСН и МСНС) и палочкоядерных нейтрофилов (табл. 1, 2).

Таблица 1 — количество эритроцитов и эритроцитарные индексы

Читайте так же:

  • Коровы мастит формы Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Комаров Владимир Юрьевич, Белкин Борис Леонидович Мастит отрицательно влияет на развитие молочного скотоводства, […]
  • Вес коров таблица Аннотация научной статьи по животноводству и молочному делу, автор научной работы — Кощаев Андрей Георгиевич, Усенко Валентина Владимировна, Яровая Людмила Дмитриевна, Лихоман Александр […]
  • Коровы классификация You are here Убойный крупный рогатый скот по возрасту и полу разделяют на следующие группы: - волы — кастрированные в раннем возрасте самцы старше трех лет; - коровы — телившиеся самки; - […]
  • Продуктивность коров в россии Аннотация научной статьи по животноводству и молочному делу, автор научной работы — Вагапова О.А., Сафронов С.Л. В статье представлена сравнительная характеристика молочной продуктивности […]
  • Опухший сустав у теленка Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Гумеров В.Г., Каримуллина И.Г., Гаффаров Х.З., Яруллин А.И., Коннов М.Н. Из патологических и клинических материалов […]
  • Эндометрия коров Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Епанчинцева Ольга Степановна Проведены гистологические исследования по изучению эндометрия у коров с клиническими […]

Показатели Условное обозначение Единицы измерения контрольная группа (n = 10) Опытная группа (n=7)

Эритроциты RBC млн/мкл 6,06±0,21 4,94±0,39*

Гемоглобин Hb г/л 112,3±3,2 105,04±3,69

Гематокрит Ht % 27,02±1,2 20,77±1,94*

Средний объем эритроцита MCV фл 44,5±0,88 41,49±0,99*

Среднее содержание гемоглобина в эритроците MCH пг 18,55±0,36 21,73±1,08

Средняя концентрация гемоглобина в эритроците MCHC г/л 420,11±14,39 540,21±36,96

Широта распределения эритроцитов по объему RDW фл 14,36±0,09 14,31±0,07

Р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Показатели Условное обозначение Единицы измерения контрольная группа (n=10) Опытная группа (n=7)

Лейкоциты WBC тыс/мкл 7,685±0,298 7,74±0,56

Палочкоядерные ней-трофилы — % 5,55 ±0,612 5,79±0,66

Сегментоядерные ней-трофилы — % 26,4±3,06 21,93±1,84

Эозинофилы — % 4,9±0,95 4,86±0,88

Базофилы — % 0,55±0,19 1,14±0,32

Моноциты — % 4,7±0,94 2,43±0,539*

Лимфоциты — % 55,95±3,27 63,43±1,63

*- Р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Биохимические показатели крови у коров опытной группы, за исключением активности АЛТ, не выходили за пределы референсных значений и существенно не изменялись по сравнению с контрольной группой.

Таким образом, анализ полученных данных показал, что при маститах

1. Биометрическая обработка лабораторных, клинических и эпизоотологиче-ских данных: Методическое руководство. — Новочеркасск, 1980. — 40с.

2. Громыко Е.В. Оценка состояния организма коров методами биохимии//Эко-логический вестник Северного Кавказа, 2005.-№2.-с.80-94

3. Долгов В.В., Свирин П.В. Лабораторная диагностика нарушений гемостаза.-М.-Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2005.-227с.

4. Карпуть И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных. -Мн.: Урожай, 1986. — 183с.

E. N. Soboleva, competitor of the chair of anatomy and physiology

Assessment of the cow at the farm SHPK «’Plemzavod May»

Summary: The results of our research. We examined and compared the biochemical and hematological blood parameters in clinically healthy cows and cows with mastitis in SHPK ‘Plemzavod May.’ Analysis of the data showed that mastitis in cows Ayrshire breed there are functional disorders of the red blood cells that must be considered in the treatment of inflammatory breast cancer.

Key words: erythrocytes, leukocytes, mastitis, lactating cows

у коров айрширской породы имеют место функциональные нарушения работы эритроцитов, что необходимо учитывать при комплексной терапии воспалений молочной железы.

Чтобы оценить состояние здоровья коров, у них берут анализы: мочу и кровь. У ветеринара есть предписание, делать это регулярно, чтобы предупредить или выявить заболевания КРС. Исследованию подвергаются все животные в стаде.

Биохимический анализ крови выявляет нарушение обмена веществ у коров, развитие лейкоза, инфекционные заболевания. Анализируя результаты, назначается определённое лечение или даются рекомендации по изменению рациона питания.

Нормальные анализы крови

Кровь у коровы берут из ярёмной вены. Она проходит в области шеи. Перед забором крови животное не кормят, не дают воды. Корову фиксируют, чтобы она не сломала иглу шприца. В лаборатории проводят биохимический анализ:

  • определяют уровень рН в крови. Он показывает количество кислоты и щёлочи в организме. У здоровой коровы он составляет 7,44 единицы. Норма говорит о том, что все внутренние органы работают нормально, никакой инфекции у животного нет, рацион питания сбалансирован. Норма резервной щёлочи – 66%;
  • определяют гематокрит, количество эритроцитов в крови. Показатель в норме у КРС – 45%, 7,0 млн/мкл. Он означает, что в организме для доставки кислорода к органам достаточно красных кровяных телец;
  • как работают лёгкие, хватает ли кислорода в крови для организма, показывает другой анализ, на гемоглобин. В норме он у КРС – 14%. Белок в крови соединяется с железом, которое удерживает кислород;
  • аномальная форма гемоглобина – метгемоглобин. Он не способен доставлять кислород в клетки тканей. Завышенный показатель укажет на кислородное голодание организма. Его количество в норме – до 350 мкмоль/л;
  • анализ крови коровы на лейкоциты указывает на развитие воспалительного процесса в организме. В норме уровень составляет – 9,1 тыс/мкл. Повышенный показатель говорит о том, что у коровы начинает прогрессировать опухоль;
  • кетоновые тела необходимы для нормальной работы сердца, почек, головного мозга, мышц. Он синтезируется в печени. Нормальное количество – 6 мг. В процессе обмена веществ кетоновые тела способствуют выделению уксусной кислоты и ацетона. Их количество необходимо анализировать. Повышенный уровень указывает на диабет, большое количество сахара. Норма составляет – до 1,4 мг. Ещё одним соединением является бета-оксимасляная кислота. Её норма 4,6 мг.
  • С помощью биохимического анализа крови коровы определяют уровень свободных жиров и микроэлементов. Если показатели не соответствуют норме, то у КРС диагностируют нарушение метаболического процесса. Это явление приводит к костным заболеваниям, сердечно-сосудистым нарушениям, аномальным проявлениям в мягких тканях.

    Уровень свободных жиров в норме – до 15,0 %. Если жиров выявлено больше, то это указывает на ожирение общего организма или отдельных внутренних органов. Корова может оставаться с нормальным весом, но сердце, печень или почки покрываются жировым слоем. Это проводит к дисфункции органов.

    При нормальном уровне минеральных веществ у коровы в крови устанавливаются следующие показатели (мг):

  • кальций – 9-13;
  • фосфор – 4,5-7,5;
  • каротин при стойловом содержании – 0,4-1,0
  • каротин при пастбищном содержании – 0,9-2,8
  • Количество электролитов измеряется в ммоль/л:

    Полезная информация
    1 магний – 0,8-1,23
    2 натрий – 130-145
    3 калий – 5,1-6,4
    4 железо – 20-36
    5 марганец – 1,8-3,6

    Чтобы подтвердить анализ крови, берут на исследование мочу и молоко у коровы. Недостаток каротина чаще всего бывает у молодняка. Нехватка витамина влияет на развитие костей, органов зрения, функции слизистых. Показатель не одинаков при различных условиях содержания животных.

    Признаки лейкоза у коров

    Установлено, что лейкоз или лейкемия, относится к вирусным заболеваниям. Чаще всего вирус охватывает особей 4-7 лет. При развитии заболевания происходит изменение структуры крови. Это приводит к образованию злокачественных опухолей внутренних органов организма. При анализе крови на лейкоз обнаруживается повышенный уровень лейкоцитов, поэтому ещё одно название заболевания – белокровие. Показатель достигает 9 тыс. клеток на 1 мкл крови.

    Вирус в организм животного попадает через ЖКТ, слизистые, через сперму при оплодотворении, через молозиво. Если поражённое животное не было выявлено и находилось вместе со стадом, то риск заражения других особей максимален. В организм телёнка вирус попадает с молозивом. На ферме объявляется карантин.

    Начало развития заболевания распознать трудно. Уровень лейкоцитов в крови может соответствовать норме. К тому же вирус постоянно мутирует, количество лейкоцитов иногда снижается. Препаратов лечения от лейкоза нет. Заболевание переходит в хроническую стадию. Инкубационный период затяжной, до 2 лет.

    Ветеринары по установленному графику обязательно проводят анализ на реакцию иммунодиффузии (РИД). Он призван установить наличие вируса в крови. Анализ показывает резкое повышение уровня лейкоцитов, изменение в клетках: их недоразвитость. Обязательно берут на исследование сперму и молоко. К внешним признакам лейкоза относится нехарактерное поведения животного и ухудшение качества молока.

    Общий анализ крови – метод исследований, позволяющий получить сведения о состоянии системы крови (ее жидкой части, фракций форменных элементов и их свойств, лейкоцитарной формулы), количестве гемоглобина, цветном показателе и оценить состояние внутренней среды.

    Данный анализ является вспомогательным при любом виде патологий, вкупе с анамнезом, клиническими признаками, инструментальными и лабораторными методами диагностики. Также, общий анализ вместе с биохимическим способен дать обстоятельную и развернутую картину функционирования как всего организма в целом, так и отдельных его органов и систем. Именно поэтому данный анализ рекомендуется также проводить при скорых плановых хирургических вмешательствах, чтобы обнажить возможные риски.

    Забор общего анализа крови желательно производить в утренние часы и натощак. Проба берется из периферических вен (при тяжелом состоянии и сильном обезвоживании допускается взятие пробы непосредственно из яремной вены) в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА).

    Интерпретацию результатов должен проводить только квалифицированный ветеринарный врач, рассмотрев все причинно-следственные связи между показателями и симптомами заболевания животного, затем выносит окончательный вердикт и ставит диагноз.

    В ветеринарной клинике «Артемида+» общий анализ крови проводится на автоматическом анализаторе IDEXX Laser Cyte.

    От забора крови до готового результата требуется всего 10-15 минут!

    Показатели общего анализа крови: их нормы и значение.

    1. Гематокрит – hematocrit , HCT – процентное соотношение плазмы крови и находящихся в ней форменных элементов.

    2. Эритроциты – RBC – «красные кровяные тельца», безъядерные форменные элементы крови, основной функцией которых является транспорт кислорода от воздухоносных путей к органам и тканям.

    3. Средний объем эритроцитов – MCV – показатель, характеризующий вместительность красных кровяных телец. Имеет первостепенное значение при диагностике анемий различного типа.

    4. Цветовой показатель – ЦП – интенсивность насыщенности эритроцита гемоглобином. Является основным диагностикумом гипо- и гиперхромной анемий.

    5. Скорость оседания эритроцитов – СОЭ, ESR – особый показатель, указывающий на нарушение состава плазмы (разрушение белковых фракций). Обнаруживает воспалительные,деструктивные процессы в организме.

    6. Тромбоциты – PLT – безъядерные форменные элементы крови, фрагменты мегакариоцитов, играющие первостепенную роль в процессе свертывания крови (образовании сгустка, — тромба).

    — собаки: 190 – 550;

    7. Гемоглобин – HGB , Hb – железосодержащий белковый элемент, наполняющий эритроциты, и способный связывать кислород для дальнейшей его транспортировки в ткани.

    — собаки: 120 – 180;

    8. Средняя концентрация гемоглобина в эритроците – MCHC – среднее насыщение гемоглобином эритроцита.

    9. Лейкоциты – WBC — «белые кровяные тельца», форменные элементы крови, имеющие ядро, основной функцией которых является защита организма от различных патологических агентов, а также от внутренних типичных патологических процессов, сопровождающихся мощным воспалением. Они делятся на 2 фракции: гранулоциты, или клетки, имеющие зернистость в ядре (нейтрофилы, базофилы, эозинофилы) и агранулоциты, с монохромным, незернистым ядром (лимфоциты и моноциты).

    10. Нейтрофилы – NEUT % – лейкоциты с зернистым ядром. Разделяются на палочкоядерные (молодые нейтрофилы, с цельным, вытянутым ядром) и сегментоядерные (зрелые нейтрофилы, с ядром, имеющим множественные «перемычки», его сегментирующие).

    собаки и кошки 0 – 3;

    11. Базофилы – BA % — фракция лейкоцитов, отвечающая за аллергические реакции замедленного и немедленного типов.

    Встречаются у мелких домашних животных крайне редко.

    12. Эозинофилы — EO% – гранулоцитарные лейкоциты, обладающие свойствами микрофагов, способные поглощать различные медиаторы воспаления, тем самым участвуя в аллергических реакциях.

    13. Моноциты – MON % — агранулоцитарные лейкоциты, обладающие способностью фагоцитировать чужеродные агенты. Один из факторов неспецифического иммунитета.

    14. Лимфоциты – ATL % — белые кровяные тельца, отвечающие за распознавание антигена и формирование соответствующего иммунного ответа на его внедрение. Различают Т- и В-лимфоциты (первые отвечают за клеточный иммунитет, вторые – за гуморальный, а именно, за выработку антител специфичных антигену).

    В настоящее время интенсивные технологии в животноводстве зани­мают веду­щее значение. Процесс эффективного молочного и мясного произ­водства все стреми­тельней отдаляет условия содержания животных от их ес­тественной среды обитания. Сегодня уже смело можно сказать, что чем выше продуктивность животных, тем больше сбоев и срывов происходит из-за нарушения обмена веществ, в связи с особым значением кормления и содержа­ния. Поэтому все без исключения специалисты жи­вотноводства должны уча­ствовать в процессе не только производства продукции, но и создания ком­фортных условий пребывания животных на ферме.

    Высокая продуктивность животных неразрывно связана с активизацией функ­ционирования всех органов и систем организма. При этом уровень об­мена веществ у некоторых животных настолько высок, что организм может работать на самоуничто­жение. К сожалению, многие руководители хозяйств, специалисты-зооинженеры, ве­теринарные врачи и даже ряд ученых этим пренебрегают. В наиболее распространен­ном понимании это выглядит так: «Животное имеет достаточно высокую продуктив­ность при имеющемся кормлении, качестве обслуживания и обработках– значит все нормально. Нужно еще поискать резервы экономии ресурсов». В результате таких на­строений многие не могут понять, почему при погоне за удоем стремительно сокраща­ется поголовье, почему коровы заканчивают третью лактацию на мя­сокомбинате с жи­ровой дистрофией печени и т.д.

    В большинстве случаев мы замечаем от­клонения в здоровье, когда уже есть сим­птомы заболевания, а, значит, негативный фактор был, он оставил свой след в орга­низме и, теперь, выдает ответную реакцию орга­низма на его воздействие. Другими словами мы пропускаем, минимум два периода развития процесса – проникновение и распространение в организме. Разрабатывая наши рекомендации, надеемся, что вы, ре­гулярно пользуясь биохимическими исследованиями крови, сможете на ранних ста­диях неблагоприятного влияния своевременно отреагировать, классифицировать и принять меры к устранению воздействия.

    Кровь является одной из главнейших связующих систем целостного организма. Она обеспечивает питание и дыхание всех органов и тканей, снабжает их необходи­мыми ферментами, гормонами, медиаторами и дру­гими гуморальными веществами, без которых нормальное функционирова­ние организма невозможно. У здоровых жи­вотных при нормальных физиоло­гических условиях существует постоянство химико-морфологического со­става и физико-химических свойств крови. Кроветворные органы чувстви­тельно реагируют на различные физиологические и, в особенности на пато­логические, воздействия на организм изменением картины крови. Поэтому исследова­ние крови имеет большое диагностическое значение.

    Конечно, нужно заметить, что определенную ценность биохимические показа­тели имеют при внутренних незаразных болезнях, интоксикациях, но в большей сте­пени отражают уровень кормления и обменные процессы. В связи с этим биохимиче­ские показатели не могут дать ответы на все вопросы, но при правильном понимании физиологических изменений становятся твердым основанием для принятия производ­ственных решений.

    ОТБОР И ПОДГОТОВКА ПРОБ КРОВИ

    Для того чтобы провести биохимическое исследование необходимо правильно про­извести отбор крови у животных.

    Существует несколько вариантов взятия крови. Многие специалисты успешно их используют. Мы же остановимся на классическом (традиционном) способе.

    У крупных животных кровь берут из яремной вены, расположенной в яремном же­лобе. Предварительно проводят антисептическую обработку – в месте вкола шерсть вы­стригают, поверхность кожи обрабатывают 70%-ным раствором спирта или 5% раствором йода.

    Для взятия используют специальные инъекционные иглы заранее стерилизован­ные. Вкол проводят под углом 45 0 и во время набора крови иглу при­жимают к стенке про­бирки, чтобы избежать вспенивания.

    Метод взятия крови у овец и коз такой же как и у коров.

    У свиней кровь получают, отсекая кончик хвоста. У поросят оптимальным ме­стом для взятия служит полая вена.

    У птицы кровь берут из разреза гребня или сережек. У гусей и уток пункцию бе­рут из мякоти ступней лапок.

    Пробирки для отбора проб крови на исследования специалисты хо­зяйств могут по­лучать в ветеринарной лаборатории или заранее готовить в условиях хозяйства, если та­кая возможность имеется.

    Во время подготовки специальной посуды на одно животное запасают по 2 био­ло­гических пробирки, объемом не менее 20 мл, и по 2 центрифуж­ных пробирки объе­мом 12 мл. В первую биологическую пробирку (20 мл) вносят 1%-ный раствор гепарина 2-3 капли или, если не определяется натрий в плазме крови, то для стабилизации исполь­зуют лимоннокислый натрий. В результате полученную плазму можно исследовать на калий, натрий, каротин, витамины А и С.

    Вторую пробирку оставляют без изменений, так как в ней будут полу­чать сыво­ротку крови. В сыворотке крови определяют содержание общего белка, белковых фрак­ций, мочевины, общих липидов, общего холестерина, общего кальция, йода неор­ганиче­ского, активность щелочной фосфатазы и др.

    В одну из центрифужных пробирок вносят 0,5 мл вазелинового масла и каплю 1%-ного гепарина. После длительного центрифугирования 20-30 мин. уже в плазме оп­реде­ляют резервную щелочность. Во вторую центрифужную пробирку вносят 5 мл 20%-ного раствора трихлоруксусной кислоты. В даль­нейшем из этой пробирки опреде­ляют глю­козу, неорганический фосфор и неорганический магний.

    Для всех пробирок используются резиновые пробки, но в некоторых случаях до­пускаются пробки из ватных тампонов завернутых в марлевую по­вязку, при обязатель­ном условии стерилизации и вертикальной транспорти­ровки проб.

    Таким образом, уже сама подготовка пробирок для взятия крови жи­вотных на ис­следование является трудоемкой и длительной. Поэтому в по­следнее время ее значи­тельно упростили. Например, для биохимического ис­следования отбирают по 2?3 20 мл пробирки, а для гематологического и того меньше. В первую очередь это связано с раз­работкой в научно-исследова­тельских институтах специальных диагностикумов для оп­ределения биохи­мических компонентов с более мягкими требованиями пробоподго­товки. Но и не последнее место занимает, конечно, сама точность и направление иссле­дований. Если в каких то реакциях вам не нужны сотые и тысячные доли (не научные исследова­ния) или вы уделяете большее внимание, каким то кон­кретным показателям, то, естест­венно, лучше упростить процедуру отбора.

    БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ

    Каротин

    Каротин является провитамином ретинола – витамина А. Содер­жится в расти­тельных кормах, молозиве, рыбьем жире. Наибольшее значение имеет ?-каротин. В тонком ки­шечнике и печени ?-каротин превращается в витамин А. Основное депо ка­ротина и ви­тамина А – печень.

    Витамин А способствует биосинтезу холестерина, ускоряет обмен фосфорных соединений, участвует в обмене веществ, повышает реактивность и резистентность, участвует в процессах иммуногенеза, повышении фагоци­тарной активности лейкоци­тов и выработке антител, стимулирует рост и раз­витие животных.

    Количество каротина в сыворотке крови определяют спектрофото­метрическим методом.

    Принцип метода основан на щелочном гидролизе и экстракции витамина А и каротина из плазмы крови при помощи малолетучих растворителей и последующем спектрофотометрическом измерении поглощения света раствором при длине волны 328 нм для витамина А и 460 нм для каротина.

    Материал для исследования – плазма крови.

    Физиологические пределы: Содержание каротина в сыворотке крови повыша­ется в летний период и снижается в зимне-стойловый период. Уровень каротина в сы­воротке крови свидетельствует о величине поступления его в организм с кормами. Ус­воение его и превращение в витамин А зависит от интенсивности обменных процессов в организме.

    Количество каротина в сыворотке крови животных

    Как и людям, животным тоже необходимо периодически сдавать анализы. Крупный рогатый скот является источником мяса и молока для человека и от того, здорова ли корова, зависят показатели качества этих двух продуктов.

    Для того чтобы как можно раньше выявить какие-либо отклонения в работе организма бурёнки, необходимо сдавать биохимический анализ крови.

    Для чего делают биохимический анализ крови у КРС

    Анализ проводится для того, чтобы выявить у животного нарушения обмена веществ, недостаток каких-либо полезных веществ в организме. С помощью этой процедуры можно вовремя заметить развитие лейкоза, определить, каким именно инфекционным заболеванием заразилось животное.

    Кровь разносит по организму все полезные вещества, витамины и минералы. От того, насколько правильно и быстро осуществляется кровоток, зависит не только общее состояние животного, но и количество получаемого молока. Если результат анализа показал нехватку нутриентов, фермер может предпринять определённые действия, такие как изменение рациона, добавление в него витаминных смесей, лекарств и прочего.

    Способы взятия крови у коровы

    Способов взять кровь у скота существует три. Они заключаются в получении образцов из яремной, молочной, хвостовой вены. Их нужно брать исключительно новой и стерильной иглой. Животное обязательно следует фиксировать в неподвижном положении, чтобы оно не травмировало само себя, не перевернуло пробирку. Перед процедурой нужно выстригать шерсть в области, где будет сделан укол, дезинфицировать поверхность раствором фенола, йодом или спиртом. На пробирке с образцом должен присутствовать порядковый номер коровы. Ёмкость ни в коем случае нельзя трясти.

    Из яремной вены

    Взятие крови из яремной вены является самым распространённым способом. Рекомендуется проводить процедуру рано утром, перед первой кормлением. Чтобы провести анализ нужно привязать голову бурёнки, зафиксировать её в неподвижном состоянии. Далее следует зажать вену в нижней трети шеи, потом вводить иглу под острым углом. Кончик иглы должен быть направлен к голове животного.

    Плюсами такого способа являются:

    • животное почти не травмируется;
    • лёгкость произведения операции;
    • быстрота проведения процедуры.
    • Среди недостатков можно выделить:

      • сильное разбрызгивание крови;
      • появление риска распространения инфекций, которые опасны не только для животных, но и для человека;
      • сложность фиксации коровы в определённом положении;
      • частое возникновение осложнений, которые проявляются в виде абсцессов, гематом;
      • стресс у коровы, который может привести к снижению удоя.
      • Из молочной вены

        Забор образца из молочной вены происходит только у взрослых коров. Упомянутые вены находятся сбоку от вымени, тянутся по брюху снизу. Они снабжают молочную железу кровью и необходимыми питательными веществами. Чем лучше развиты вены, тем больше молока даёт бурёнка. Животное необходимо зафиксировать. Чтобы провести процедуру правильно потребуется несколько человек. Для начала нужно сбрить или максимально состричь волосяной покров в месте укола и обработать участок спиртом или йодом. Перед вами должен быть виден своеобразный небольшой бугорок — это именно то место, куда следует делать укол. Иглу нужно вводить очень осторожно, чтобы не нанести вред животному. Она должна проходить немного под углом, до момента, пока не потечёт тёмная венозная кровь.

        Положительными сторонами данного метода являются:

      • доступная цена материалов, необходимых для проведения процедуры;
      • высокая скорость сбора образца;
      • меньшее разбрызгивание, чем при взятии образца из яремной вены.
      • Минусов у такого способа значительно больше, чем плюсов:

        • высокий риск травмировать животное;
        • контакт с кровью коровы;
        • во время процедуры тёлка испытывает огромный стресс, потому что забор образца проводится в очень нежной зоне, которую животное постоянно оберегает;
        • сложность проведения процедуры.

        Данный способ получения образца крови у крупного рогатого скота устарел. Благодаря новым технологиям, методам и оборудованию такую процедуру проводят гораздо быстрее и легче, минимизируя риски для животного.

        Из хвостовой вены

        Из хвостовой вены брать образец наиболее безопасно. Сейчас всё более популярным становится использование вакуумных систем — это специально сконструированные пробирки, в которых уже присутствует нужный антикоагулянт и снижено давление, чтобы кровь плавно вытекала в ёмкость. Для осуществления забора образца из хвостовой вены необходимо продезинфицировать место укола. Далее медленно приподнять хвост, удерживая его за среднюю треть. Чтобы процедура прошла наиболее гладко, следует выбрать место на уровне от двух до пяти позвонков, которое делит хвост вдоль на две равные части. Укол должен быть плавным, под углом в 90 градусов. Иглу вводят до упора.

        Из явных положительных сторон этого метода можно выделить:

        • полученный образец стерилен;
        • риск образования сгустков в пробирке значительно снижен;
        • не требуется фиксировать животное;
        • очень высокая скорость проведения процедуры. Один ветеринар может за час взять до двух сотен образцов;
        • крайне малый шанс возникновения побочных эффектов или травм у коровы;
        • исключение непосредственного контакта с кровью;
        • корова не испытывает стресса и привычный удой сохраняется.
        • Минусами упомянутого способа забора крови являются:

          • более высокая стоимость оборудования;
          • низкая популярность упомянутого метода.
          • Биохимические показатели крови у коров в норме

            При проведении биохимического анализа крови выделяют несколько основных показателей, которые являются наиболее важными при ведении молочного и мясного хозяйства. Чтобы лучше понимать, как должны выглядеть идеальные анализы, следует знать таблицу норм:

            Что нужно знать для балансировки рациона коровам? Это не только химический анализ кормов, но биохимические показатели крови крс. В ходе исследований можно увидеть реальную картину обмена веществ у животных.

            Если вы не знаете, что такое биохимические исследования проб сыворотки крови, обратитесь к своему ветеринарному врачу. У него наверняка есть похожий документ, который выложен здесь ниже. Если нет, срочно с ветеринарной службой исследуйте кровь стада. Это даст ответы на многие вопросы.

            Биохимический анализ крови – это метод лабораторный диагностики, который позволяет определить работу внутренних органов, получить информацию о метаболизме (обмене веществ) и выяснить потребность в макроэлементах.
            Если вам сложно уловить суть, то попробуйте перевести данную проблему на самого себя.

            Вы заболели, пошли в поликлинику, записались к врачу на прием. Что первым делом он просит вас сделать? Правильно! Сдать анализы.

            Вот и в животноводстве все аналогично. Только необходимо работать на опережение. Увидев картину биохимии, зоотехник может подкорректировать рацион под потребность животного.

            А за этим следует улучшение здоровья и, как правило, увеличение продуктивности.

            Хочу отметить, что пробы крови, представленные в документе, взяты от проблемных коров. К примеру, у коровы по кличке Аура был кетоз. Данное заболевание подтвердило наличие кетоновых тел в сыворотки крови.

            Правильнее будет взять пробы крови у нескольких физиологических групп:

          • нетели
          • коровы в фазу раздоя
          • коровы второй половины лактации
          • сухостой первой половины
          • сухостой второй половины
          • Возьмите от каждой группы минимум 10 образцов проб.

            КРАТКО ОБ ЭЛЕМЕНТАХ, КОТОРЫЕ УКАЗАНЫ В ДАННОМ ИССЛЕДОВАНИИ:

            Кальций – является основным элементом в строении костной ткани, крови, нервной и мышечной ткани.

            Фосфор, так же как и кальций, основа костной ткани. Участвует в обмене жиров и углеводов. Данный элемент необходим для нормального развития микроорганизмов в рубце коровы.

            «Недостаток кальция и фосфора в организме животных может привести к рахиту, остеомаляции, остеопорозу, остеофиброзу».

            Белок (он же протеин) – главная составляющая всех живых клеток. Протеин участвует во всех жизненно важных процессах: размножении, росте, развитии, продуктивности, а так же является основным компонентом ферментов, гормонов и иммунных тел.

            Как видите, роль белка в организме значима, более подробно о роли протеина и других элементов, мы еще поговорим в отдельных статьях на блоге.

            Резервная щелочность – по сути это показатель кислотно-щелочного соотношения в организме.

            «Количество двуокиси углерода (мл), которое может связать100 мл плазмы крови»

            Снижение данного параметра говорит о сдвиге кислотно-щелочного равновесия в сторону ацидоза, повышение — в сторону алкалоза.

            Каротин – является провитамином (биохимическим предшественником витамина А). Витамин А участвует в развитии и росте клеток, обеспечивает нормальное состояние слизистых оболочек, поддерживает зрительные функции.

            Кетоновые тела – промежуточные продукты обмена веществ белков, жиров и углеводов, которые образуются в печени. Это бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота, ацетон. Повышенный уровень таких веществ говорит о нарушении обмена веществ.

            НОРМЫ БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У КОРОВ

            кальций 2,5 – 3,13 ммоль/л
            фосфор 1,45 – 1,94 ммоль/л
            белок 72- 86 г/л
            каротин 0,4 – 1,0 мг%
            резервная щелочность 46 -66%

            Отлично. У нас есть результаты анализов. Мы знаем, на что влияет каждый показатель. Осталось только решить – что с этим делать?

            На мой взгляд, есть три варианта развития событий.

            1. Постараться сбалансировать рацион, что на практике, практически нереально. Улучшать кормовую базу при заготовке силоса, сенажа, сена. Обратить внимание видовой состав трав (отдать предпочтение сахару или протеину).

            2. Включить в рацион животных кормовые добавки, которыми заполнен наш рынок. Здесь только вопрос цены и качества. К примеру, поставщик примексов в мое хозяйство, разработал минеральную добавку, чтобы восполнить пробелы в рационе.

            3. Попробуйте найти медикаментозный выход. К примеру, существует множество препаратов, которые содержат витамин А (карток, карсел, элеовит, карофертин, каролин и др). Почему бы вам таким способом не восполнить дефицит данного витамина?

            Автор: Виктор Боченков

            Специалист по молочному скотоводству, главный зоотехник в ЗАО «Осьминское»

            В.В. Мосейчук,
            A.M. Ермаков

            ГНУ СКЗНИВИ Россельхозакадемии

            Одной из наиболее актуальных в современной ветеринарии является проблема борьбы с респи- ^? г раторными болезнями телят, которые по массовости и распространению занимают ведущее место среди всех пато­логий. В общей заболеваемости телят болезни органов дыхания составляют от 3,6 до 5,4%, среди них превалируют инфекционные заболевания, вызванные вирусом герпеса и бактериями рода Chlamydophila (2,3, 5).

            По нашим данным, на долю этой ассоциации в хозяйствах Ростовской области приходится более 30% всех респираторных заболеваний.

            Несмотря на достигнутые успехи, в диагностике и лечении респираторных болезней остается еще много нерешенных воп­росов, слабо изучены морфологические и биохимические изме­нения крови при инфекционном ринотрахеите у телят.

            Инкубационный период при инфекционном ринотрахеите может длиться от нескольких дней до 1 месяца. У телят инфекци­онный ринотрахеит проявляется в виде бронхопневмоний, поли-и моноартритов (в одной из форм или в смешанной форме), но чаще — в форме бронхопневмонии. У молодняка развивается чаще катаральная реже катарально-гнойная или крупозная пнев­мония с изменениями в интерстиции. У больных бронхопневмо­нией телят отмечают лихорадку, угнетение, анорексию, истощение и глухой кашель. Полиартриты и моноартриты встречаются реже. Иногда телята рождаются с пораженными суставами.

            У коров болезнь проявляется рождением мертвых и слабых телят, рождением уродов, абортами, цервицитами, вестибулова-гинитами, эндометритами, маститами. Аборты встречаются толь­ко у коров с первой стельностью. Рождение мертвых и слабых телят также встречается у коров с первой стельностью и у коров, дающих сомнительную реакцию в РДСК. Нередко у инфициро­ванных коров рождаются клинически здоровые телята. Специ­фическим признаком инфекционного ринотрахеита у коров яв­ляется сыпь на слизистой влагалища в виде бугорков. Сначала бугорки имеют размеры с маковое зерно и еле заметны, их окраска красная. Через некоторое время они увеличиваются в размерах, становятся прозрачными и имеют красно-оранжевый цвет (везикулы). Впоследствии бугорки достигают размера про­сяного зерна и приобретают беловатую окраску (гранулемы). Слизистая оболочка влагалища гиперемирована вокруг бугор­ков или гиперемирована полностью. Лечение такого вагинита в течение 3 недель цинк-ихтиоловой мазью и фуразолидоновыми палочками не дает эффекта, что дает возможность исключить кампилобактериоз и трихомоноз. Однако, бугорковую сыпь на слизистой влагалища имеют не все серопозитивные коровы. Бу­горковая сыпь наиболее характерна для коров, дающих сомнительную реакцию в РДСК.

            Более характерным для инфекционного ринотрахеита среди коров являются не абор­ты, а рождение мертвых, слабых и нежизне­способных телят.

            Наибольшее распространение среди телят имеет респираторная форма инфекци­онного ринотрахеита, менее распространены фибринозные полиартриты и моноартриты и еще реже встречаются смешанные формы (пневмония и артрит). Гастроэнтериты не учитывались, так как в хозяйстве не ведется их учет, а также из-за того, что малая харак­терность изменений в кишечнике не позво­ляет поставить диагноз на инфекционный ри-нотрахеит. На протяжение нескольких лет мы изучали особенности течения ринотрахеита и его динамику в хозяйствах Ростовской облас­ти. Почти у всех телят в 2001 году встречалась диспепсия, однако телят, больных инфекцион­ным ринотрахеитом могло оказаться не бо­лее 17% (если учитывать, что при инфекционном ринотрахеите у телят очень редко поражается только один кишечник). Уменьше­ние случаев заболевания телят инфекционным ринотрахеитом в 2000 году связано со строгим выполнением противоэпизоо-тических мероприятий (в связи с ликвидацией лептоспироза). Увеличение в 2001 году случаев заболевания телят инфекцион­ным ринотрахеитом связано с вводом большого количества пер­вотелок в молочное стадо и нестрогим выполнением противо-эпизоотических мероприятий. Среди телят не регистрировались случаи энцефалитов и конъюнктивитов или их учет в хозяйстве не велся.

            Впервые диагноз на инфекционный ринотрахеит был постав­лен серологическим методом (РДСК) в 1996 году. Для постановки диагноза коровам и молодняку старше 6 месяцев использовали серологический метод (РДСК) и клинические исследования. Для постановки диагноза телятам возрастом до 6 месяцев использо­вали клинические исследования, данные патологоанатомических вскрытий, результаты микроскопии мазков-отпечатков из патоло­гического материала и исследование мазков из носовой полости в прямом методе РДСК. Кроме того, учитывали эпизоотологичес-кие и эпидемиологические данные.

            Цель исследования:
            изучить основные морфологические и биохимические изменения крови у телят при инфекционном ри­нотрахеите.

            Материалы и методы. Диагностику ИРТ проводили с по­мощью набора для амплификации ДНК Bovine herpesvirus тип 1 (CatN° Н 2073. Lot N° 20107). Для установления тяжести и осо­бенностей течения ИРТ всем животным про­водили морфологический и биохимический анализ крови. Морфологический анализ крови включал: определение числа эритроцитов и лейкоцитов в сетке камеры Горяева, опреде­ление концентрации гемоглобина гемиглобин-цианидным методом, гематокрита по методи­ке, предложенной И. И. Архангельским и Л. П. Сошенко (1993), определение скорости оседа­ния эритроцитов (СОЗ), выведение лейкограм-мы по общепринятым методикам [1,2,3].

            Биохимический анализ крови включал определение следующих показателей: щелоч­ной фосфатазы по ферментативному гидролизу n-нитрофенилфосфата, активности аспартата-минотрансферазы и аланинаминотрансфера-зы по методу Райтмана-Френкеля, а-амилазы — по Каравею, глюкозы — орто-толуидиновым методом, мочевины — с помощью био-лахема-теста, белка — с помощью биуретовой реакции, билирубина — по методу Ендрашика-Грофа, аль­бумина — по реакции с бромкрезоловым зеле­ным, креатинина — методом Яффе [2,3,4].

            Результаты исследования .
            Нами проведены морфологичес­кие исследования крови телят, больных инфекционным ринотра­хеитом (ИРТ), при различном клиническом течении заболевания (табл. 1).

            Морфологические показатели крови характеризовались не­значительным снижением числа эритроцитов при легком и сред­нем течении и выраженным снижением при тяжелом и крайне тяжелом течении ИРТ .

            При очень тяжелом течении число эритроцитов и количес­тво гемоглобина снижалось соответственно до 3,1+0,36*1012/ л и 111,2±4,1 г/л при норме у клинически здоровых телят 7,3±0,14*1012/л и 165±2,5 г/л, степень достоверности очень высокая (Р Вывод.
            Таким образом, по гематологическим и биохимичес­ким изменениям можно судить о тяжести течения ИРТ у телят, оп­ределяя фракции белка на 10-15 сутки заболевания, также можно прогнозировать гибель животного. К этому периоду течения ин­фекционного ринотрахеита уровень общего белка существенно снижался в основном за счет альбуминовой фракции.

            1. Борисович Ю.Ф. Инфекционные болезни животных: Справочник/Сост. Ю.Ф. Борисович, Л.В. Кириллов; Под ред. Д.Ф. Осидзе. -М.: Агропромиздат, 1987. — с.141-150

            2. Крюков Н. Н., Инфекционные болезни крупного рогато­го скота, М., 1974, с. 83-94

            3. Панасюк Е.Л., Матяш В.И., Токунова ТА Смешанные вирусно-бактериальные нфекции: особенности клиники, диагнос­тики, лечения //Сучаш шфекцм.-2007. — N°2. -С. 44-50

            4. Сюрин В. Н., Фомина Н. В., Частная ветеринарная виру­сология, М., 1979. -с. 61-67