Наркоз для коров

КЕСАРЕВО СЕЧЕНИЕ (Sectio caesarea), извлечение плода через разрез брюшной стенки и матки, когда роды не могут осуществиться естеств. путём [путем] . При К.с. стремятся сохранить жизнь самки и плода. Чем раньше от начала родов (6—12 ч) приступают к К.с., тем благоприятнее бывает исход. Крупных животных можно оперировать в стоячем (в станке) и лежачем положении. Во втором случае коров, кобыл, овец и коз фиксируют на правой стороне, свиней — на левой, плотоядных — в спинном положении. Применяют потенцированную местную анестезию (наркоз может вызвать асфиксию плода): у крупных животных — паралюмбальную проводниковую, поясничную эпидуральную (у коровы); у мелких — инфильтрационную. Операционное поле изолируют простыней с нашитым карманом (50 X 40 см) для временного помещения эвентрированных внутренностей при операции на стоячем животном. Операция состоит из двух приёмов [приемов] — лапаротомии и гистеротомии. На стоячем животном делают разрез дл. 35—40 см, параллельный ходу волокон внутр. косой мышцы живота или вертикальный в середине подвздоха. Оттеснив сальник вперёд [вперед] , выводят часть плодоносящего рога матки наружу, изолировав его салфетками. Разрез делают по большой кривизне рога на дл. 20—30 см, не доводя его до яичника на 10—20 см. После рассечения плодных оболочек захватывают предлежащие конечности плода (а если возможно, то и голову), извлекают плод наружу, обрабатывают пуповину, очищают рот и ноздри плода от слизи. Плодные оболочки оставляют в матке до их самопроизвольного отделения через родовые пути. Рану матки зашивают двухрядным непрерывным кишечным швом. На брюшную стенку накладывают также непрерывный шов, захватывая брюшину, поперечный и внутр. косой мускулы живота; узловым швом сшивают все остальные слои и кожу. На лежачей корове делают горизонтальный разрез, отступив на 5—10 см дорзально от подкожной вены живота или на середине расстояния между нею и белой линией живота. Также выполняют К. с. у мелкого рогатого скота и кобыл; у свиней лапаротомию делают косым разрезом в подвздохе (на 5 см ниже маклока), либо парамедианным разрезом по верхней границе вымени. Извлечённый [Извлеченный] рог матки рассекают вблизи её [ее] тела. Плоды поочерёдно [поочередно] вытесняют к разрезу и, отделив пуповину, извлекают. Часть последа, к-рая хорошо отделяется, удаляют. Сук и кошек оперируют, применяя вентральную лапаротомию. После операции проводят противомикробную терапию, в толщу стенки матки инъецируют питуитрин. Наружные швы при К.с. снимают на 12—14-е сут.

Лит.: Андрияш Л. Т., Кесарево сечение у коров, М., 1961.

ОБЕЗБОЛИВАНИЕ

Различают два основных вида обезболивания: общее, или наркоз, и местное, или анестезия.

Общее обезболивание, или наркоз. Наркоз может быть вызван введением в организм хлоралгидрата, спирта и других наркотических средств (табл. 45).

Местное обезболивание, или анестезия. Для инфильтрационной анестезии у продуктивных животных чаще используют 0,5%-ный, а для блокады нервов — 2-3%-ный раствор новокаина. Для стерили- зации раствор доводят только до кипения. При длительном кнпячении, а также при хранении более 2-3 сут раствор новокаина теряет анестезирующие свойства. Предельная доза новокаина для лошади 2,5 г, для крупного рогатого скота 2 г, для овцы и козы 0,5 г, для свиньи 0,5-0,75 г.

Анестезия нерва рогового отростка. Выполняется с целью операции на роговом отростке.

В точке, лежащей на середине расстояния между задним краем орбиты и основанием рога, вводят нглу на глубину 1-1,5 см (до кости) под нижний край гребня лобной кости и инъецируют 10 мл 3%-ного раствора новокаина.

Анестезия нижне челюстного, нерва у крупного рогатого скота (по- Воронину). Показаниями для этой анестезии являются операции в ротовой полости, извлечение инородных тел из начальной части пищевода.

Иглу вводят на 1 см ниже середины прямой линии, проведенной от наружного угла глаза к основанию ушной раковины, направляя конец иглы несколько назад в сторону основания противоположной ушной раковины. Когда инъекционная игла достигнет переднего края челюстной вырезки, инъецируют 5 мл 3%-ного раствора новокаина. Затем смещают иглу с края вырезки и продвигают ее в том же направлении (через челюстную вырезку) до соприкосновения с костью и вводят еще 20-25 мл указанного раствора. Таким же способом обезболивают нижнечелюстной нерв с противоположной стороны.

Анестезия нервов брюшной стенки. Анестезируют последний межреберный, подвздошноподчревный и подвздошнопаховый нервы у коров по Башкирову, у лошадей по Магда.

Анестезия нервов брюшной стенки у коров (по Башкирову). Для блокады последнего (13-го) межреберного нерва иглу вводят по заднему краю указанного ребра, несколько выше уровня свободного конца поперечнореберного отростка 1-го поясничного позвонка. После прокола кожи иглу продвигают до упора в кость, а затем ее смещают с кости и продвигают глубже на 0,5 см и вводят 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Извлекая иглу, дополнительно инъецируют внутримышечно и подкожно 10 мл указанного раствора.

Для блокады подвздошноподчревного нерва иглу вводят по переднему краю поперечнореберного отростка 2-го поясничного позвонка, отступя 4,5-5 см от его свободного конца, и продвигают ее до соприкосновения с костью. Затея конец иглы смещают с кости, направляют ее вглубь еще на 0,5-1 см и вводят 10 мл раствора анестетика. При извлечении иглы инъецируют дополнительно внутримышечно и подкожно 10 мл раствора новокаина.

Для блокады подвздошнопахового нерва иглу вводят по переднему краю поперечнореберного отростка 3-го поясничного позвонка, отступя 7-7,5 см от его свободного конца, до упора о костный край отростка. Затем смещают конец иглы с кости, продвигают ее на глубину 0,5-1 см и инъецируют 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Извлекая иглу, дополнительно вводят внутримышечно и подкожно 10 мл упомянутого раствора.

Блокада нервов брюшной стенки у лошадей (по Магда). Для блокады последнего межреберного нерва и двух названных выше поясничных нервов иглу вводят перпендикулярно к плоскости кожи вначале на уровне передненаружного угла 1-го поясничного позвонка, а затем на уровне середины наружного (свободного) края поперечнореберных отростков 2-го и 3-го поясничных позвонков. Техника инъекции раствора новокаина такая же, как и у крупного рогатого скота.

Анестезия нервов полового члена у быков (по Воронину). Анестезию выполняют с целью исследования этого органа и хирургической операции на нем.
В области прямокишечноседалищной ямки проводят прямую линию от поперечного отростка первого хвостового позвонка к седалищному бугру. В точке, делящей эту линию на равные отрезки, вводят направляющую иглу (Боброва). Углубляя иглу по направлению к бугру локтевой кости (эта же сторона) на 8-10 см, прокалывают крестцовоседалищную связку. В просвет направляющей иглы вводят иглу меньшего диаметра и инъецируют 40 мл 3%-ного раствора новокаина. Затем иглу оттягивают несколько назад, придают ей горизонтальное положение и, вновь продвигая ее вперед на 3- 4 см, инъецируют еще 20 мл указанного раствора. Таким же способом блокируют нервы с противоположной стороны.

Анестезия нервов полового члена у баранов (по Воронину). Анестезию делают с той же целью, что и у быков. Барана фиксируют в стоячем положении, приподнимают хвост. В прямокишечноседалищной ямке прощупывают задний край крестцовоседалищной связки. Касательно ее внутренней поверхности вводят иглу (под углом 30° к горизонтальной плоскости) на глубину, равную длине названного края связки. Инъецируют 10-15 мл 1,5%-го раствора новокаина. Затем иглу извлекают назад, придают ей горизонтальное положение и дополнительно вводят 5 мл указанного раствора. Таким же способом блокируют нервы с противоположной стороны.

Анестезия полового члена у лошади (по Магда). В области промежности нащупывают седалищную дугу и смещают ткани влево. Справа от середины названной дуги вводят иглу и продвигают ее сверху вниз, сзади наперед и справа налево вплоть до кости. Когда конец иглы достигнет кости, инъецируют 20 мл 3%-ного раствора новокаина.

Читайте так же:

  • Скорость движения коровы Нормативы температуры, влажности воздуха (табл. 14), скорости движения воздуха (табл. 15) в помещениях для разных половозрастных групп крупного рогатого скота рассчитаны на холодный и […]
  • Норсульфазол для коров 2 - (пара - Аминобензолсульфамидо) - тиазол, C9H9N3O2S2 Белый или белый со слегка желтоватым оттенком кристаллический порошок. Очень мало растворим в воде, растворим в растворах едких и […]
  • Серая масть коров МАСТЬ . Окраска животных, определяемая пигментацией кожи и волосяного покрова. У диких животных масть имеет приспособительный характер, а у домашних в результате искусственного отбора и […]
  • Сколько земли нужно для 1 коровы Одно из основных направлений специализации крестьянских хозяйств — производство мяса и молока. Поэтому при организации каждого хозяйства нужно соблюдать принцип обоснованного сочетания […]
  • Нодулярный дерматит коров Нодулярный дерматит крупного рогатого скота (заразный узелковый дерматит, кожная бугорчатка, узелковая экзантема) – инфекционная болезнь, характеризующаяся устойчивым повышением […]
  • Как не заразиться бешенством от коровы Для слабовидящих Переводчик Главное меню Для сотрудников Опрос Анкетирование На современном этапе бешенство продолжает оставаться одной из актуальных проблем здравоохранения. По оценке […]

Анестезия нервов пальца у крупного рогатого скота (по Шаброву). Анестезию делают с.целью операции на пальцах.

В четырех точках конечности вводят иглу на глубину 1,5-2 см (под фасцию) и инъецируют по 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Первые две инъекции производят на ладонь ниже запястного (скакательного) сустава, по наружному и внутреннему краям сухожилий разгибателей пальца, а вторые — по тем же краям сухожилий сгибателей пальца.

Анестезия нервов пальца у лошади (по Магда). Анестезию выполняют с целью операции на пальцах.

Выше путового сустава на уровне нижнего утолщенного концЯ грифельной кости вводят иглу по переднему краю сухожилия глу бокого сгибателя пальца и инъецируют 10 мл 3%-ного раствора но вокаина. Затем иглу подкожно продвигают под нижний край назван ной кости и вводят еще 4-5 мл анестезирующего раствора. Вначале блокаду выполняют с медиальной, а затем с латеральной поверхноя сти конечности.

Эпидуральная сакральная (хвостовая). Показаниями к указанной анестезии могут быть: оказа ние помощи при патологических родах; операции на хвосте, пряма кишке, наружных половых органах. У самок эпидуральная сакралы пая анестезия в сочетании с анестезией нервов брюшной стенки применяется при кесаревом сечении.

Иглу вводят в углубление между 1-м и 2-м хвостовыми позвонками, направляя ее вначале перпендикулярно к коже, а затем впере под углом 45-60°. Когда игла упрется в кость позвоночного канала ее извлекают в обратном направлении на 0,5 см и инъецируют 15- 20 мл 1,5%-ного раствора новокаина (низкая анестезия).

НАРКОЗ В ВЕТЕРИНАРИИ

Главной целью наркоза является подавление реакций организма на вмешательство во время проведения операций. В первую очередь наркоз направлен на подавление болевой реакции. Наркоз состоит из нескольких компонентов:

Медикаментозный сон, с которым в большинстве своём и ассоциируется понятие «наркоз»;

Обезболивание или анальгезия – подавление или снижение выраженности вегетативных реакций организма на хирургическую травму. Формы проявления – это увеличение частоты сердечных сокращений или тахикардия, повышение артериального давления и другие явления;

Миорелаксация, или иначе расслабление мышц. Она нужна для обеспечения оптимальных условий во время проведения оперативного вмешательства.

Классификация видов наркоза разнообразна. Так, в зависимости от пути введения наркотического вещества наркоз бывает: ингаляционный и неингаляционный.

Ингаляционный. В этом случае наркотическое вещество вдыхается или вдувается через дыхательные пути. Вдыхаются летучие жидкости, например, эфир, хлороформ, а вдуваются газообразные вещества, такие как окись азота, циклопропан. Его подразделяют, в свою очередь, на масочный, интубационный и эндотрахеальный наркоз.

Неингаляционный. Его выполнение заключается во введении наркотических препаратов различными путями, минуя легкие. Он подразделяется на внутривенный, внутрикостный, оральный, внутрибрюшинный, ректальный, внутримышечный и дистанционный наркоз.

Простой или однокомпонентный. Введение одного вещества. Например, хлороформ, эфир, хлоралгидрат и другие;

Смешанный или многокомпонентный. Введение смеси из двух или нескольких веществ. Например, эфир и закись азота;

Комбинированный. Введение нескольких веществ в организм последовательно через определенные промежутки времени;

Сочетанный. Применение в сочетании общей (наркоз) и местной анестезии при проведении операции;

Потенцированный. Данный вид наркоза заключается в усилении и продлении действия основного наркотического препарата, путем предварительного введения нейролептиков и транквилизаторов.

глубокий наркоз, применяемый при длительных операциях. Он характеризуется глубоким сном, отсутствием рефлексов и расслаблением мышц;

поверхностный наркоз, применяемый при несложных кратковременных операциях. Он достигается введением наркотического вещества в сниженной дозе, которой достаточно для успокоения и непродолжительного обезболивания животного.

Само проведение наркоза складывается из четырёх этапов.

Первый этап (введение в наркоз) является самым опасным и ответственным для анестезиолога, ведь именно в этот период велик риск возникновения различных осложнений. Чаще всего для введения в наркоз пользуются барбитуратами.

Общий принцип поддержания наркоза – это адекватная защита организма от операционной травмы. Во время этого этапа используют анальгетики, наркотические препараты, миорелаксанты, искусственную вентиляцию лёгких, вазоактивные и кардиотропные препараты и другие.

Посленаркозный период начинается с момента прекращения подачи анестетика. Животное необходимо согреть, обеспечить возможность свободного дыхания, обеспечить наблюдение.

Средства для наркоза. Наиболее часто используемыми ингаляционными анестетиками являются галотан, изофлуран, закись азота и метоксифлуран. В России наиболее часто для анестезии используют неингаляционные анестетики. Это барбитураты, кетамина гидрохлорид, золетил, альфа-2-агонисты и пропофол.

Заключение: Таким образом, наркоз является важнейшим вопросом в ветеринарии. Он облегчает работу ветеринарных специалистов при проведении операций. Существует множество видов наркоза и препаратов, необходимых для его проведения. В связи с этим предоставляется возможность выбора для каждого отдельного случая. Большое значение имеет подбор наиболее безопасного для животных и специалистов вида наркоза. Выбор зависит от возраста и общего состояния больного животного, объема оперативного вмешательства, технических возможностей клиники.

Список использованной литературы

1. Биохимические и некоторые иммунологические показатели крови у собак, при лечении инфицированных ран сорбентами природного происхождения/В. А. Ермолаев, Е. М. Марьин, C. Н. Хохлова, О. Н. Марьина//Известия Оренбургского ГАУ. 2009. -№4.-С. 174-177.

2. Веремей, Э.И. Распространение и профилактика заболеваний пальцев и копытец у крупного рогатого скота / Э.И. Веремей, В.А. Журба // Ветеринарная медицина Белоруссии. — 2003. — № — 2. – С. 32-35.

3. Даричева, Н.Н. Основы ветеринарии: учебно-методический комплекс / Н.Н.Даричева, В.А.Ермолаев / Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия. — Ульяновск, УГСХА, 2009. — Том 1. – 201 с.

4. Даричева, Н.Н. Основы ветеринарии: учебно-методический комплекс / Н.Н.Даричева, В.А.Ермолаев / Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия. — Ульяновск, 2009. — Том 1. – 201 с.

5. Ермолаев В.А. Гемостазиологические аспекты гнойной хирургической патологии крупного рогатого скота / В.А. Ермолаев // Актуальные проблемы ветеринарной хирургии: Мат. междунар. научно-методической конф. ВГАУ. -Воронеж, 1997. –С. 67-68.

6. Ермолаев, В.А. Исследование микробного фона ран в зависимости от времени года, локализации и фазы заживления/В.А. Ермолаев, P.M. Юсупов//Материалы международного симпозиума «Научные основы обеспечения защиты животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний». -Казань, 2005. -С. 458 -46.

7. Ермолаев, В.А., Никулина Е.Н. Динамика морфологических показателей крови телят с гнойными ранами / В.А. Ермолаев, Е.Н. Никулина // Материалы Международной научно-практической конференции «Кадровое и научное обеспечение инновационного развития отрасли животноводства»// Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – Казань, 2010. – Т. 203. – С. 109-114.

8. Зеленевский Н.В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура на латинском и русском языках. Nomina Anatomica Veterinaria/Н.В. Зеленевский.- СПб.:Лань, 2013.- 400 с.

9. Кашин, А.С. Закрытие послеоперационных ран брюшной стенки у животных/ А.С. Кашин, Л.В. Медведева // Ветеринария. — 2001. -№ 4. -С. 38-40.

10. Клиническая диагностика внутренних болезней животных/С.П. Ковалев, А.П. Курдеко, Е.Л. Братушкина, А.А. Волков, Ю.К. Коваленок, С.Н. Копылов, К.Х. Мурзагулов, И.А. Никулин, В.Д. Раднатаров, Г.Г. Щербаков, А.А. Эленшлегер, А.В. Яшин. – СПб.: Лань, 2016.-544 с.

11. Клинический ветеринарный лексикон/ В.Н. Байматов, В.М. Мешков, А.П. Жуков, В.А. Ермолаев. – М.: КолосС, 2009. — 327 с.

12. Ляшенко, П.М. Влияние гидрофильных мазей на гемостазиологические показатели плазмы крови у телят с гнойными ранами/П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев//Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения Материалы V Международной научно-практической конференции. – Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2013. -С. 104-107.

13. Марьин, Е.М. Болезни копытец у коров различных пород / Е.М.Марьин, В.А Ермолаев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. — 2011. — Т. 2. № 30-1. — С. 104-105.

14. Марьин, Е.М. Природные сорбенты в лечении гнойных ран у животных: монография/ Е. М. Марьин, В. А. Ермолаев, О. Н. Марьина. — Ульяновск: УГСХА, 2010. – 141 с.

15. Медведева, Л.В. Исследование прочностных характеристик швов желудка и тонкокишечного анастомоза у кошек / Л.В. Медведева, Н.Б. Алексенко // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2015. — № 2 (124). — С. 73-77.

16. Медведева, Л.В. К вопросу выбора шовного материала при операциях на полых органах желудочно-кишечного тракта у животных / Л.В. Медведева, А.В. Усикова //Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2015. — № 1 (123). -С. 107-113.

17. Медведева, Л.В. Микрофлора при заживлении лапаротомных ран/ Л.В. Медведева// Ветеринария. — 2001. — № 10. — С. 35.

18. Медведева, Л.В. Сравнительная оценка механической прочности однорядных и двухрядных швов внутренних полых органов в эксперименте / Л.В. Медведева, Н.Б. Алексенко, П.Б. Макарова // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. -2015. -№ 5 (127). -С. 118-122.

19. Неотложная хирургия: учебно-методический комплекс/П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, А.В. Сапожников. -Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2013. -187 с.

20. Никулина, Е.Н. Динамика гематологических показателей при лечении гнойных ран у телят / Е.Н. Никулина, П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев // Ветеринарная медицина. Современные проблемы и перспективы развития: Материалы Международной научно-практической конференции. ФГОУ ВПО «Саратовский ГАУ». – Саратов: ИЦ «Наука», 2010. – С. 315-317.

21. Никулина, Е.Н. Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят/ Е.Н. Никулина, В.А. Ермолаев, П.М. Ляшенко//Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2012. -Т. 4. № 36-1. -С. 78-79.

22. Никулина, Е.Н. Морфогистологические изменения тканей при лечении гнойных ран гидрофильными мазями в сравнительном аспекте/Е.Н. Никулина, П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев //Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2011. -Т.3. № 31-1. -С. 113-114.

23. Общая хирургия животных. Учебник для вузов/ С.В. Тимофеев, Ю.И. Филиппов, С.Ю. Концевая, С.В. Позябин, П.А. Солдатов, С.М. Панинский, Д.А. Дервишов, Н.П. Лысенко, В.А. Ермолаев, М.Ш. Шакуров, В.А. Черванёв, Л.Д. Трояновская, А.А. Стекольников, Б.С. Семёнов. – М.: ООО «Зоомедлид», 2007. — 670 с.

24. Оперативные методы исследования животных: методическое указание для проведения лабораторно-практических занятий по клинической диагностике и внутренним незаразным болезням сельскохозяйственных животных / В.А. Ермолаев, А.М. Липатов, Н.К. Шишков, С.Н. Золотухин. — Ульяновск: УГСХА, 1995.- 14 с.

25. Основы ветеринарии /В.А. Ермолаев, Л.А. Громова, О.А. Липатова, Л.Б. Конова, А.И. Козин, Ю.С. Докторов/ Под редакцией профессора В.А. Ермолаева. Рекомендовано учебно-методическим объединением высших учебных заведений Российской Федерации по образованию в области зоотехнии и ветеринарии для студентов высших учебных заведений в качестве учебно-методического пособия по специальности 310700 — «Зоотехния». — Ульяновск: УГСХА, 2004. — 485с.

26. Применение синтетических шовных материалов в ветеринарной хирургии (обзор) / Л.В. Медведева, В.Н. Кречетова, Н.Б. Алексенко, А.В. Усикова // В книге: Аграрная наука — сельскому хозяйству. сборник статей: в 3 книгах. Алтайский государственный аграрный университет. -2016. -С. 263-267.

27. Сапожников, А.В. Клинико-морфологические показатели крови при лечении ран светодиодным излучением красного диапазона/А.В. Сапожников, И.С. Сухина, В.А. Ермолаев //«Молодёжь и наука XXI века»: Материалы II Открытой Всероссийской научно-практической конференции молодых учёных. -Ульяновск: УГСХА, 2007. -Часть 1. -С. 148-151.

28. Семенов, Б.С. Практикум по оперативной хирургии животных с основами топографической анатомии домашних животных (учебники и учебные пособия для высших учебных заведений) / Б. С. Семенов, В.А. Ермолаев, С.В. Тимофеев. — М.: КолосС, 2006. — 263 с.

29. Семенов, Б.С. Практикум по оперативной хирургии животных с основами топографической анатомии домашних животных (учебники и учебные пособия для высших учебных заведений) / Б. С. Семенов, В.А. Ермолаев, С.В. Тимофеев. — М.: КолосС, 2003. — 263 с.

30. Чеходариди, Ф.Н. Патогенетическая терапия инфицированных ран у крупного рогатого скота/ Ф.Н. Чеходариди, С.Г. Гадзаонов, М.С. Гугкаева//Вестник ветеринарии. -2008. -Т. 46. № 3. -С. 45-48.

31. Экономические затраты различных способов лечения инфицированных кожно-мышечных ран у собак / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, О.Н. Марьина, П.М. Ляшенко // Материалы Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения». — Ульяновск: УГСХА, 2009. — С. 66-67.

Наркоз крупного рогатого скота

Полный наркоз у жвачных животных ввиду возможного развития тимпании рубца, усиления слюноотделениями рвоты (см. «Осложнения при наркозе») применяется редко. У этих животных наркоз чаще не доводят до глубокой степени, а сочетают с местным обезболиванием.

Для предварительной медикаментозной подготовки крупного рогатого скота к применению наркоза или местного обезболивания, а также для целей успокоения животного (промедикация) при клинических исследованиях и некоторых оперативных вмешательствах применяют аминазин или литическую смесь, состоящую из аминазина, промедола и димедрола.

Аминазин вводят внутримышечно или внутривенно в дозе 0,5 мг на 1 кг массы животного. В литической смеси к указанной дозе аминазина добавляют 0,2 мг промедола и 0,1 мг димедрола. Для быка массой 1000 кг эти ингредиенты растворяют в 30—50 мл 40%-ного раствора глюкозы (И. И. Магда). Действие этих препаратов наступает при внутривенном введении через 5 мин, а при внутримышечном — через 15 —45 мин.

Алкогольный наркоз. Животное выдерживают на голодной диете в течение 12 ч. Перед операцией ему вливают через рот из резиновой бутылки 40° спирт или водку в дозе 2—3 мл на 1 кг массы животного. Наркоз можно вызвать и медленным внутривенным введением 30° ректификованного спирта на изотоническом растворе хлорида натрия в дозе 0,6—1 мл на 1 кг массы животного. Сон наступает быстро, бывает неглубоким и продолжается от 1 до 3 ч. Этот наркоз применяют только для оглушения коров и небольших бычков.

Атропин-хлоралгидратный наркоз. Вначале вводят подкожно 5—10 мл 1%-ного раствора сернокислого атропина, а через 5—10 мин — внутривенно 10%-ный раствор хлоралгидрата, приготовленный на изотоническом растворе хлорида натрия в дозе 1 мл раствора на 1 кг массы животного (0,1 г хлоралгидрата на 1 кг массы животного). Раствор хлоралгидрата вводят медленно (30—40 мл в минуту).

Предварительное введение атропина ослабляет секреторную функцию слюнных желёз и слизистых желёз дыхательных путей и тем самым уменьшает опасность развития аспирационной бронхопневмонии.

студент, факультета ветеринарной медицины Омского ГАУ,

канд. техн. наук, доцент Омского ГАУ, г. Омск

Одним из главных и основных вопросов хирургии является общее обезболивание. С помощью него легче проходит оперативное вмешательство, также оно защищает животное от пагубного влияния боли. Общая анестезия делится на несколько видов. Это наркоз, нейролептаналгезия и электрообезболивание [3].

В данной статье мы остановились на таком виде общей анестезии как наркоз. Цель – выяснить, что такое наркоз, описать его виды и значение в ветеринарной практике. Задачи:

  • Дать определение термину «наркоз»;
  • Определить виды наркоза;
  • Описать значение наркоза в ветеринарии;
  • Выяснить, какие средства наиболее безопасны и практичны.
  • Итак, наркоз – это искусственно вызванное состояние организма, характеризующееся глубоким, но обратимым угнетением функций центральной нервной системы под действием наркотических веществ, что проявляется в последовательной потере сознания, болевой и тактильной чувствительности, расслаблением мышц и угнетением рефлексов. При этом сохраняется деятельность жизненно важных центров: дыхательного, сосудодвигательного и гладкой мускулатуры [3].

    1. Медикаментозный сон, с которым в большинстве своём и ассоциируется понятие «наркоз»;
    2. Обезболивание или анальгезия – подавление или снижение выраженности вегетативных реакций организма на хирургическую травму. Формы проявления – это увеличение частоты сердечных сокращений или тахикардия, повышение артериального давления и другие явления;
    3. Миорелаксация, или иначе расслабление мышц. Она нужна для обеспечения оптимальных условий во время проведения оперативного вмешательства [1].
    4. Классификация видов наркоза разнообразна. Так, в зависимости от пути введения наркотического вещества наркоз бывает: ингаляционный и неингаляционный [2].

      • Ингаляционный. В этом случае наркотическое вещество вдыхается или вдувается через дыхательные пути. Вдыхаются летучие жидкости, например, эфир, хлороформ, а вдуваются газообразные вещества, такие как окись азота, циклопропан. Его подразделяют, в свою очередь, на масочный, интубационный и эндотрахеальный наркоз.

      Рисунок 1. Проведение масочного наркоза

    5. Неингаляционный. Его выполнение заключается во введении наркотических препаратов различными путями, минуя легкие. Он подразделяется на внутривенный, внутрикостный, оральный, внутрибрюшинный, ректальный, внутримышечный и дистанционный наркоз [3].
    6. Также по количеству, последовательности и характеру действия наркотических веществ наркоз делится на:

    7. Простой или однокомпонентный. Введение одного вещества. Например, хлороформ, эфир, хлоралгидрат и другие;
    8. Смешанный или многокомпонентный. Введение смеси из двух или нескольких веществ. Например, эфир и закись азота;
    9. Комбинированный. Введение нескольких веществ в организм последовательно через определенные промежутки времени;
    10. Сочетанный. Применение в сочетании общей (наркоз) и местной анестезии при проведении операции;
    11. Потенцированный. Данный вид наркоза заключается в усилении и продлении действия основного наркотического препарата, путем предварительного введения нейролептиков и транквилизаторов [2], [3].
    12. По силе и длительности действия наркотического препарата наркоз подразделяют на:

    13. глубокий наркоз, применяемый при длительных операциях. Он характеризуется глубоким сном, отсутствием рефлексов и расслаблением мышц;
    14. поверхностный наркоз, применяемый при несложных кратковременных операциях. Он достигается введением наркотического вещества в сниженной дозе, которой достаточно для успокоения и непродолжительного обезболивания животного [2], [3].
    15. Само проведение наркоза складывается из четырёх этапов.

      Окончание наркоза начинается до завершения операции и согласовывается анестезиологом и хирургом. Заключается в постепенном исключении из анестезии определенных компонентов для восстановления всех показателей гомеостаза.

      Посленаркозный период начинается с момента прекращения подачи анестетика. Животное необходимо согреть, обеспечить возможность свободного дыхания, обеспечить наблюдение [5].

      Средства для наркоза. Наиболее часто используемыми ингаляционными анестетиками являются галотан, изофлуран, закись азота и метоксифлуран. В России наиболее часто для анестезии используют неингаляционные анестетики. Это барбитураты, кетамина гидрохлорид, золетил, альфа-2-агонисты и пропофол [4].

      Таблица 1

      Средства для наркоза и дозы для разных видов животных

      Во время наркоза у крупного рогатого скота нередко возникает тимпания рубца, рвота, усиленная саливация и выделение слизи бронхиальными железами, что грозит закупоркой дыхательных путей. Поэтому практически наркоз рогатого скота обычно не доводят до глубокой степени, а сочетают его с местной анестезией.

      За 10 мин до начала наркоза крупному рогатому скоту вводят под кожу 5-10 мл 1%-ного раствора атропина, который благотворно влияет на дальнейшее течение наркоза.

      Он улучшает работу сердца, благодаря снятию вагусного торможения, расширяет бронхи, улучшает дыхание и ограничивает секрецию слюнных и слизистых желез. Вслед за этим внутривенно или внутримышечно инъецируют 2,5%-ный раствор аминазина — 2 мл на 100 кг массы. После внутримышечной инъекции действие наступает через 30 мин, а после внутривенной — через 5–7 мин. Животное успокаивается и усиливается эффект обезболивания.

      Для крупного рогатого скота применяют хлоралгидрат, алкоголь и тиопентал (пентотал)-натрий. Во избежание аспирации пищевых масс, животному не дают корма и воды за 12 ч до наркоза. Это предохраняет животных от аспирационной пневмонии и тимпании. Последняя предупреждается также низким положением головы животного во время операции.

      Внутривенный хлоралгидратный наркоз. В яремную вену коровы (можно и в подкожную вену живота) вводят 10%-ный раствор хлоралгидрата из расчета 0,1 г/кг массы животного. Ввиду недостаточной глубины наркоза его сочетают с местной анестезией.

      Внутривенный алкогольный наркоз. После премедикации внутривенно инъецируют этиловый спирт с глюкозой и хлоридом натрия. Применяют следующую пропись: спирт этиловый — 445,0, хлорид натрия — 6,0, глюкоза — 68,0, дистиллированная вода – 930,0 – вводить половину дозы корове 450–500 кг.

      Внутривенный тиопентал (пентотал)-натриевый наркоз. Премедикация, как в предыдущем случае. Затем внутривенно медленно инъецируют 5%-ный раствор тиопентал-натрия из расчета 15 мг/кг массы животного. При этом необходимо следить за поведением животного, так как наркоз наступает настолько быстро, что в процессе инъекции оно может упасть.

      Оральный алкогольный наркоз. Для наркоза берут водку в количестве 250-300 мл на 100 кг массы животного и заливают из резиновой бутылки в ротовую полость или вводят непосредственно в преджелудки посредством рото-пищеводного зонда.

      Универсальным средством для обезболивания, транквилизации и мышечной релаксации крупного рогатого скота является ромпун или 2%-ный рометар в дозе 0,25–1 мл на 100 кг массы животного.

      У жвачных применение анестезии осложнено специфической анатомией и физиологией животных этого вида.

      Чтобы понять, в чем заключаются трудности, надо вспомнить, как функционируют преджелудки в нормальных условиях. В рубце корм обрабатывают микробы, инфузории и грибы. Для этого необходимо постоянное перемешивание микроорганизмов с кормом, что происходит благодаря сокращениям стенок рубца (руминация), и защелачивание содержимого рубца для поддержания постоянства pH, так как в процессе жизнедеятельности микроорганизмов постоянно вырабатываются кислые продукты, нейтрализующиеся щелочной слюной. У крупного рогатого скота выделяется и попадает в преджелудки до 60 л слюны в 1 ч. Помимо того, при обработке растительных кормов микроорганизмами выделяется значительное количество газообразных продуктов, которые во избежание вздутия рубца (тимпания) жвачные животные постоянно отрыгивают. Акты глотания слюны и отрыжки газов регулируются центрами в центральной нервной системе.

      При угнетении функций нервной системы (при общей анестезии) нарушается и прекращается отрыжка газов, глотание слюны, перемешивание содержимого рубца (атония рубца). Это ведет к гибели микроорганизмов от недостатка питательных веществ и щелочных компонентов слюны в рубце (ацидоз ингибирует жизнедеятельность полезных микроорганизмов-симбионтов). К тому же постоянно выделяющаяся слюна создает угрозу аспирации ее дыхательной системой, попадание ее в легкие чревато полной асфиксией (при большом количестве слюны в легких) или развитием в дальнейшем бронхопневмонии (при относительно небольшом количестве слюны в легких).

      Слизистая оболочка верхних дыхательных путей крупного рогатого скота богата бокаловидными клетками, которые во время анестезии гиперсекретируют. Функции мерцательного эпителия, выстилающего слизистую оболочку верхних дыхательных путей, во время анестезии угнетены, вследствие чего слизь не выводиться во внешнюю среду, а затекает в бронхи и альвеолы легкого, провоцируя бронхопневмонию.

      Помимо того, выделяющиеся газы вызывают тимпанию (вздутие) рубца, что тоже ведет к затруднению дыхания и нарушению работы сердечно-сосудистой системы из-за давления на легкие и сердце через диафрагму и повышенное давление на сосуды кровенаполненных органов брюшной полости. При тимпании во время общей анестезии приходится прибегать к руменоцентезу (проколу рубца через брюшную стенку), что не способствует проведению операции в стерильных условиях. Зондирование рубца через рот у анестезированного животного, находящегося в положении лежа, возможно, но газы практически не выводятся (вследствие закупорки просвета зонда кормовыми массами).

      Временное (из-за анестезии) нарушение работы рубца ведет к дисфункции книжки. Ее основная функция — всасывать излишки жидкости из отфильтрованной сеткой водной взвеси переработанного корма для обеспечения нормальной работы следующего отдела — сычуга. При анестезии и, следовательно, атонии преджелудков продвижение кормовых масс прекращается, а всасывание воды из них в книжке продолжается. Кормовые массы уплотняются и возникает завал книжки.

      Таким образом, ослабление моторики преджелудков, тимпания рубца, усиленная функция слюнных и бронхиальных желез, рвота с аспирационной пневмонией или асфиксией, давление на диафрагму преджелудков (при длительном пребывании в положении лежа на боку) значительно затрудняют дыхание. Это препятствует проведению общей анестезии и вынуждает ветврачей применять вместо общей анестезии местную (с умеренной релаксацией) и проводить большинство операций на животном, находящемся в положении стоя. Разработано много способов местной анестезии (проводниковая, эпидуральная и др.).

      В тех случаях, когда необходимо проводить операцию в боковом положении и под общей анестезии, животному назначают противобродильные средства, препараты, уменьшающие секрецию слюнных и бронхиальных желез, придают телу наклонное положение, чтобы голова была несколько ниже туловища. При угрожающем вздутии осуществляют руменецентез.

      Премедикация. Выполняют, чтобы облегчить повал, оптимизировать глубину и течение анестезии. С этой целью чаще всего используют ромпун (в дозе 0,25…0,5 мл/100 кг массы), аминазин (1 мг/кг), комбелен (2…4 мл/100 кг), ветранквил (внутривенно 0,5…1 мл/100 кг или внутримышечно 1…2 мл/100 кг). Премедикация перед введением анестетика создает благоприятный фон для течения общей анестезии, углубляет и потенцирует ее без особого риска для жизни животного.

      М. В. Плахотин рекомендует для предотвращения саливации и активирования дыхания за 10… 15 мин до проведения анестезии ввести подкожно раствор атропина (0.05…0,1 г на животное).

      Анестезия хлоралгидратом. У крупного рогатого скота опасна, особенно глубокая, поскольку может привести к гибели (И. Е. Мозгов, 1979) из-за частых осложнений.

      Б. З. Иткин (1990) рекомендует профилактировать тимпанию: выдерживать животное на голодной диете в течение 12 ч, внутримышечно вводить аминазин и атропин для премедикации, а также на время анестезии вводить в рубец пищеводный зонд, через который газы самопроизвольно выходят.

      Для профилактики затекания слизи в бронхи и развития бронхопневмонии под лопатку и переднюю треть грудной стенки можно подложить подушку так, чтобы голова животного оказалась несколько ниже грудной стенки. При этом секрет слизистой оболочки верхних дыхательных путей стекает во внешнюю среду. Премедикацию осуществляют атропином (внутримышечно) для торможения секреции слизистых желез; для нейролептанальгезии используют рометар (0,5 мл/100 кг) или аминазин (2,5 мл/кг 2,5%-ного раствора в смеси с 0,5%-ным раствором новокаина 1:1). Доза хлоралгидрата внутривенно 0,11…0,12 г/кг массы тела.

      Анестезия этиловым спиртом. Для крупного рогатого скота этиловый спирт — лучший препарат для общей анестезии, так как жвачные его легко переносят, однако глубокий наркоз получить трудно. Этиловый спирт чаще всего применяют как рауш-наркоз. Делают премедикацию и вводят внутрь 40%-ный спирт из расчета 250…300 мл/100 кг массы тела животного (В. М. Власенко, И. С. Панько и др., 1986).

      М. В. Плахотин рекомендует проводить внутривенную анестезию по следующей прописи: этиловый спирт — 445,0, хлорид натрия — 6,0, глюкоза — 68,0 и дистиллированная вода — 930,0. Раствор вводят медленно со скоростью 10…40 мл/мин, следя задыханием животного, и при ухудшении состояния введение временно прекращают.

      Б. З. Иткин (1990) предлагает вводить внутрь крупному рогатому скоту 40%-ный этиловый спирт в следующих дозах: массой 200…400 кг — 800…1500 мл; 400…500 кг — 1000…2000 мл, овцам и козам — 300 мл. Внутривенно этиловый спирт вводят в концентрации 44 % на физиологический раствор в дозе 0,35…0,40 мл/кг.

      Другие авторы рекомендуют 33%-ный этиловый спирт (анестетические дозы) внутривенно: крупному рогатому скоту 400…600 мл (анестезия продолжается около 1,5 ч), мелкому рогатому скоту 100…150 мл. Есть данные, что жвачным внутривенно вводят до 3…4 мл/кг массы тела.

      Внутрь крупному рогатому скоту 40%-ный этиловый спирт (в качестве болеутоляющего и противобродильного средства) вводят в дозе 150…200 мл, мелкому рогатому скоту — 60…100 мл.

      Анастезия рометаром. Рометар (ромпун, ксилазин, ксилавет Xylaject 2 %, Xyla и т. д.) в зависимости от дозы обеспечивает различной степени обездвиживание животных и даже вызывает анестезию. Препарат наиболее эффективен у крупного рогатого скота. Депрессия дыхания может наступить от дозы 4,5 мл/100 кг массы, а смерть от остановки дыхания (что встречается редко) — от дозы 6…15 мл/100 кг массы животного. Ромпун можно применять в течение нескольких дней подряд. В последние месяцы беременности препарат может спровоцировать роды, но жизнестойкость телят при этом не снижается. Через 5 мин после введения ромпуна животное опускает голову и закрывает глаза, высовывает язык, происходит саливация и непроизвольная дефекация, иногда животное мычит. Анальгезия сохраняется 30…40 мин. Действие в зависимости от дозы может сохраняться 1…5 ч.

      Сила действия ромпуна у крупного рогатого скота зависит от дозы, которая согласно инструкции составляет 0,25 мл; 0,5; 1,0 и 1,5 мл на 100 кг массы тела в зависимости от цели применения. Его вводят внутримышечно после 12-часовой голодной диеты. В малых дозах препарат успокаивает, в средних — вызывает обезболивание, в повышенных — обусловливает миорелаксацию. От первой дозы отмечают четко выраженное успокоение и анальгезию, животное может стоять. Вторая доза вызывает заметное состояние покоя, который через 1 ч достигает максимальной степени, животное иногда ложится через 15…20 мин, но его можно поднять.

      Реакция на введение повышенной дозы (1 мл/100 кг массы тела) наступает через 15…20 мин и продолжается 1,5…2,0 ч. Такая доза обеспечивает сильно выраженную седацию, анальгезию, значительную миорелаксацию и возможность проводить болезненные хирургические вмешательства. При длительных операциях необходима дополнительная местная анестезия. Доза 1,5 мл/100 кг массы позволяет полностью обездвижить животное на срок 1…1,5 ч при значительной потере болевой чувствительности.

      Продлить действие ромпуна повторным введением целесообразно через 10…15 мин после первого введения. После прекращения действия препарата повторным введением его можно продлить, но почти невозможно углубить. По другим данным, в случае необходимости действие можно продлить повторным введением препарата через 10…30 мин после первого.

      При отсутствии эффекта ромпун вводят повторно в половинной дозе. Крупный рогатый скот переносит 3-кратные терапевтические дозы, а лошади и собаки 10-кратные.

      Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.