Как брать кровь у коровы

Р.И. Файзулин, Л.М. Ерова, Е.А. Тимофеева (НГАУ)

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛОСТРАЛЬНОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА G В КРОВИ ТЕЛЯТ

Антитела у животных с первым и вторым типом плацент не проникают из материнского организма в плод плацентарным путем. Новорожденные животные этих видов (кобыла, корова, свинья) не имеют антитела даже в том случае, когда они родились от гипериммунных матерей. Антитела у них появляются при сосании материнского молока, т. е. для этих животных большое значение имеет выпаивание молозива матери в первые часы после рождения.
Уровень иммуноглобулинов в сыворотке телят, отнятых от матери после рождения, оказывается крайне низким. И у этих телят отмечается наибольшая смертность от кишечной септицимии (до 15 %) и 90 % погибших имеют признаки гипогаммаглобулинемии. После выпойки молозива уровень иммуноглобулинов увеличивается.
За две недели до отела IgG из крови коровы переходят в молочную железу. Селективный переход иммуноглобулинов данного подкласса обусловлен рецепторами для IgG на мембране эпителиальных клеток вымени. Так же к концу беременности под действием гормонов активизируется система местного иммунитета молочной железы.
Прогестерон, эстроген и пролактин индуцируют миграцию предшественников плазматических клеток, синтезирующих Ig секреторный, из лимфоидной ткани кишечника в вымя.
Попавший вместе с молоком в тонкий отдел кишечника новорожденного теленка Ig образует комплекс с рецепторами для Fc-фрагмента. Иммуноглобулины располагаются на мембране энтероцитов. Это наиболее эффективно при рН 6,0 – 6,5.
Молозивные иммуноглобулины переходят из кишечника в лимфаток неизменными с временной селекцией: IgG – 27 ч., IgМ – 16 ч., IgА – 22 часа от рождения.
Состояние кишечника играет большую роль в процессе проникновения Т-антител в кровяное русло новорожденному животному. При содержании телят в неудовлетворительных условиях микроклимата (темные, сырые, холодные, грязные помещения) и при неполноценном кормлении происходит активация сапрофитной микрофлоры кишечника, они переходят в микробов-паразитов с накоплением вирулентных и патогенных свойств, что нарушает всасывание антител.
Материалы и методы
Содержание иммуноглобулинов в сыворотке крови определяли в точечном иммуноферментном анализе на нитроцеллюлозной мембране.
Цельные пробы сыворотки крови наносили на мембрану типа «Hybond C» и высушивали. Для сравнения делали последовательные разведения принятой в качестве стандарта сыворотки крупного рогатого скота в растворе бычьего альбумина известной концентрации (100 мг/мл) и в сыворотке норки. Содержание белка в сыворотке норки определяли спектрофотометрически по поглощению на длине волны 280 нм. Полученные разведения сыворотки наносили на мембрану в качестве линейки. Несвязавшиеся белки отмывали в растворе 0,1 М бикарбоната натрия с 0,1 % тритона X-100 (отмывочный раствор). Блокирование проводили в 0,1 % растворе казеина в отмывочном растворе. Затем мембрану помещали в раствор конъюгата моноклональных антител против IgG крупного рогатого скота с пероксидазой из корней хрена в отмывочном растворе в рабочем разведении на 30 минут. После тщательной отмывки мембраны от несвязавшегося конъюгата мембраны окрашивали в субстраном буфере (50 мМ имидазола, 50 мМ HCl, 1мМ H2O2, 2 мг/мл диаминобензидина). Степень окрашивания контролировали визуально. Мембраны отмывали в дистиллированой воде и высушивали.
Собственные исследования
Определение IgG в крови телят разных возрастных групп в Учхозе «Тулинское».
Схема опыта:
Были подобраны четыре группы телят по 10 животных в каждой:
1 группа – в возрасте 1 месяца,
2 группа – 1,5 месяца,
3 группа – 2 месяца,
4 группа – 1 неделя.
Забор крови у телят производился однократно. Кровь брали из яремной вены обычным методом в пробирки «Флоринского» по 3 – 4 мл, в которые предварительно вносится по 1 капле консерванта (для предотвращения развития микрофлоры).
Пробы хранили при температуре 4 °С.
Затем пробы крови наносились на нитроцеллюллозную мембрану. Мембрану высушивали. Затем замачивали в отмывочном растворе, при этом незакрепившиеся белки переходят в раствор. Мембраны помещали в течение 10 минут в 0,3 % растворе Н2О2 для инактивации эндогенной пероксидазной активности, после чего мембрану на 15 минут помещали в раствор специфического моноклонального пераксидазного концентрата. Хорошо отмытая от несвязавшегося конъюгата мембрана была проявлена в субстратном растворе 0,003 % Н2О2 и 0,01 % диаминобензедина.
Степень окрашивания пятна на мембране пропорциональна долевому содержанию иммуноглобулинов IgG ко всему белку.
Были получены следующие результаты: в группах телят 1-, 1,5-, 2-месячного возраста IgG находился на уровне 8,3 %. В группе телят в возрасте 1 неделя содержание IgG у животных лавировало от 1,3 % (1теленок) , 3 % (2 теленка), 8,3 % (3 теленка).
Анализируя полученные данные, можно предположить, что телятам третьей группы молозиво выпаивалось либо не вовремя, либо не выпаивалось вообще.
Выводы
1. Колостральный иммунитет играет важную роль для новорожденных телят в связи с тем, что антитела, полученные новорожденными животными от матери, способствуют защите животных от инфекционных и незаразных болезней.
2. Низкий уровень IgG может быть обусловлен как несвоевременным выпаиванием молозива и нарушением процесса всасывания иммуноглобулинов из желудочно-кишечного тракта, так и низким уровнем IgG в молозиве и т. д.
3. Экспресс-метод позволяет на месте узнать количество IgG в крови животных и оперативно принять меры для устранения иммунодефицита.

Бюджетное учреждение Удмуртской Республики

Кровь берут утром до кормления животных (у жвачных в любое время) в количестве не менее 5-7 мл. Для многоразовых пробирок кровь выдерживают при температуре 30-38°С (в термостате),на инфекционный эпидидимит — при температуре 20-30°С — 1ч или при комнатной температуре 8-10ч, для свертывания. Сгусток крови от стенок пробирки отделяют стальной спицей, затем пробирки выдерживают при 4-10 0 С (в прохладном месте). Через сутки сыворотку отделяют в сухие стерильные пробирки. Пробы нумеруют в соответствии с описью животных и направляют для исследования в лабораторию в свежем или консервированном виде.

Можно направлять в лабораторию цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать, и она не подвергнется гемолизу. Пробирки закрывают пробками и устанавливают для транспортировки в строго вертикальном положении. Зимой пробы с кровью (сывороткой) упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзали. Так же кровь можно отбирать в вакуумные системы для забора крови (пробирки для получения сыворотки с активатором свертывания или активатором свертывания с гелем).

С момента отбора проб крови до доставки ее в лаборатории должно пройти не более 48 часов.

Консервирование сывороток проводят:

-добавлением 1 капли 5%-ного раствора фенола на каждый мл сыворотки при тщательном перемешивании;

-сухой борной кислотой до получения насыщенного раствора и образования на дне пробирки небольшого осадка (не подлежат консервированию борной кислотой сыворотки крови для исследования на хламидиоз, лейкоз крупного рогатого скота);

-путем однократного замораживания (не подлежат замораживанию сыворотки крови для исследования на паратуберкулезный энтерит, случную болезнь, инфекционный эпидидимит баранов).

Консервированию подлежит только сыворотка крови. Кровь консервировать запрещено.

Неконсервированные сыворотки пригодны для исследования в течение 6 суток со дня взятия крови при условии хранения их при 4-8 0 С.

Сыворотки консервированные фенолом или борной кислотой, пригодны для исследования в течение 30 суток, замороженные сыворотки – в течении 3 суток после однократного оттаивания. Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Кровь от абортировавших или подозрительных в заболевании животных для получения сыворотки отбирают дважды: при выявлении аборта, в период клинического проявления болезни и повторно, от них же, через 14-21 день. Сыворотки хранят при -20°С (морозильная камера) и доставляют в лабораторию одномоментно.

Животных, вакцинированных против хламидийного аборта, серологически не исследуют в течение 1 года.

На лептоспироз пробы крови берутся не ранее чем через 5-7 суток после проявления клинических признаков болезни или не ранее чем через 90 суток после вакцинации крупного рогатого скота, для свиней и животных других видов после вакцинации через 60 суток, а также не ранее, чем через 10-12 дней после проведенного лечения.

Для исследования на лейкоз гематологическим методом направляется кровь. Ее отбирают в пробирки с антикоагулянтом (трилон Б из расчета 0,1 мл 10%-ного раствора на 1 мл крови). Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают, путем переворачивая пробирки несколько раз. Так же кровь можно отбирать в вакуумные системы для забора крови (пробирки для гематологических исследований с ЭДТА К2/К3). Стабилизированную кровь направляют для исследования в лабораторию в день взятия, от момента взятия крови до исследования ее в лаборатории должно пройти не более 36 часов.

Отбор проб для исследования на сибирскую язву. Для исследования берут пробы размером 5 х 5 см с периферических незагнивших и незаплесневевших участков шкуры. Тара для проб должна быть металлическая, внутри выстланная бумагой и закрыта крышкой, плотно охватывающей снаружи края тары. После упаковки тару пломбируют или опечатывают и помещают в тканевый чехол.

Материал подготовлен в сотрудничестве с лабораторией МВЦ «Пёс и кот»

Читайте так же:

  • Выпадает шерсть у коров Доброго времени суток! У моей буренки уже 1.5 месяца с шеи опадают волосы (именно только с шеи с двух сторон, на остальных участках тела залысин нет) и чешется. Связались с ветеринаром, […]
  • Запуск коровы препараты Обзор препаратов для лечения и профилактики маститов коров По данным отечественных и зарубежных исследователей, в течение годового цикла маститом переболевает от 25 до 70 и более процентов […]
  • Перчатки для осеменения коров Перчатка толщиной плёнки 22 микрон. Перчатка окрашенная, с усеченным рукавом. Купить перчатки для искусственного осеменения, а также любое оборудование для искусственного осеменения и […]
  • Периоды лактации коровы Вы здесь При плодотворном осеменении коров в первую охоту продолжительность лактации короткая (менее 305 дней), при удлинении сервис-периода за указанный год будет недополучено телят, […]
  • Выход мяса с теленка На сегодняшний день мясное скотоводство является едва ли не основой всего сельского хозяйства в нашей стране. Но именно оно является одним из самых проблемных и сложных занятий. К […]
  • Кормление теленка в первые дни Каждый зоотехник решает задачу рентабельности выращивания из телочек здоровых высокопродуктивных коров. Некоторые специалисты намеренно снижают затраты на выращивание телят, что часто […]

Забор биоматериала у кошек, собак, кроликов, хорьков, морских свинок осуществляют из вен конечностей, а также шеи:

  • внутренней бедренной вены или передней подкожной вены предплечья;
  • латеральной подкожной вены голени (у собак);
  • яремной вены на шее.
  • Взятие крови у собаки проходит в сидячем положении или лежа на боку. Взятие крови у кошки из вены чаще проходит при фиксации пациента лежа на боку.

    Взятие крови у животных из яремной вены зачастую проходит легче и быстрее за счет быстрого тока крови в вене.

    Забор крови у птиц отличается от других видов животных. Кровь у птицы берут из вены крыла или яремной вены.

    Техника взятия крови у животных из периферических вен

    Взятие крови у собак и кошек достаточно рутинная процедура.

  • Подготовка – выстригание (забривание) шерсти вдоль расположения вены.
  • Наложение жгута до окончания процедуры. За исключением забора крови на коагулограмму.
  • Снятие жгута.
  • На место прокола наложить давящую повязку во избежание образования гематомы.
  • Важно! Применение вакуумных систем значительно упрощает процедуру, обеспечивает безопасность персонала от контакта с кровью, уменьшает травматичность и снижает уровень стресса для животного.

    Взятие венозной крови у животных вакуумными системами

    Техника взятия крови у животных из яремной вены

    Взятие крови у собак и кошек процедура не сложная.

    • Подготовка – выстригание шерсти вдоль расположения вены на шее.
    • Дезинфекция кожи при помощи специфичных растворов. Кожа непосредственно перед проколом иглой должна высохнуть.
    • Яремную вену пережимают ниже места входа иглы до окончания процедуры. За исключением забора крови на коагулограмму.
    • Визуализация вены.
    • Прокол и постепенное продвижение иглы вдоль сосуда.
    • Забор в пробирку, перемешивание с антикоагулянтом (перевернуть, но не встряхивать).
    • Извлечение иглы из вены.
    • На место прокола наложить тампон, прижать рукой и подержать 30-60 секунд, чтобы не допустить гематомы.
    • Важно! Вакуумные системы позволяют взять кровь из яремной вены быстро, почти безболезненно для животного, без контакта с кровью персонала и владельца. Подобная техника взятия биоматериала менее распространена в связи с недостаточной информированностью врачей и малой технической оснащенностью ранее. На сегодняшний день данная методика становится все более рутинной.

      Анализы у коров, быков, молодняка, берут в связи с выявлением определённых заболеваний. В законодательстве закреплен забор крови у КРС 2 раза в год на лейкоз, туберкулёз и бруцеллёз. Исследование крови телят проводят 1 раз в год. Отказ от забора крови приводит к штрафу владельцев животных.

      Тест пластины для проведения теста по определению субклинического мастита у коров

      Кроме плановых исследований, анализы берут при проведении профилактических мероприятий. Смотрят количество лейкоцитов, скорость оседания эритроцитов, уровень гемоглобина. При подозрении на мастит у коровы исследуют молоко. Во избежание развития остеомаляции, послеродового пореза проводят биохимический анализ мочи.

      Анализ молока на мастит

      Перед тем как начать процесс доения, оператор осматривает вымя корове, проверяет молочную железу на наличие мастита. Мастит относится к инфекционным заболеваниям. Возбудителем является стафилококк. В вымя он проникает различными путями:

    • через повреждения кожи; при нарушении режима доения, несоблюдении правил ухода за выменем, на коже появляются трещины, через которые проникают болезнетворные бактерии; при укусе насекомого может развиться воспалительный процесс;
    • кишечная палочка, грибы и стафилококки попадают в вымя из желудка коровы через мягкие ткани;
    • при медикаментозной терапии происходит нарушение микрофлоры в тканях вымени; снижается иммунитет, развивается патологическая микрофлора.
    • При пальпации молочной железы отмечаются уплотнения. Они возникают в отдельных или во всех долях железы. Вымя становится жёстким, воспалённым, красноватым. Развивается отёчность, железа увеличивается в размерах. Корова испытывает болезненные ощущения при движении и во время процесса доения. Для подтверждения заболевания или опровержения подозрений на мастит, у животного берут на анализ молоко: перед доением сцеживают первые капли.

      Исследования на мастит у коров проводят с использованием 5% раствора «Димастина». Берут молочно-контрольную пластику МКП-2. На ней есть 4 углубления для каждой доли вымени, в них сцеживают молоко: по 1 мл в каждую ячейку. В молоко добавляют реактив. Вращают пластинку в горизонтальном положении 15-30 секунд. Анализируют состояние молока:

    • мастита нет, если консистенция жидкости не изменилась;
    • анализ положительный, если молоко приобрело консистенцию желе; в лунке заметен сгусток;
    • если жидкость стала гуще, но желе и сгустка не образовалось, то реакция сомнительная; требуются дополнительные исследования.
    • При мастите определяется повышенная кислотность. В норме рН 6,5 – жидкость в МКП белое. Если цвет изменился и стал жёлтым, то кислотность выше нормы. Красный цвет указывает на повышенное содержание щёлочи. Молоко приобретает малиновый, пунцовый цвет при ярко выраженной щёлочности.

      Вместо «Димастина» могут использовать 10% раствор «Мастидина». Исследования проводят идентичным способом, но цвет жидкости при нарушении рН будет другим:

      Полезная информация
      1 светло-сиреневый оттенок – кислотно-щелочной баланс в норме
      2 белый цвет молока – повышенная кислотность
      3 тёмно-сиреневый – повышенная щёлочность

      Если в какой-либо ячейке обнаружился стафилококк, то проводят дополнительные исследования с использованием 2% раствора «Мастидина». Если молоко изменило свою консистенцию и цвет, то применяют методику отстаивания.

      У коровы берут последние молоко, по 10 мл из каждой доли железы, которая показала положительную реакцию. Молоко помещают в пробирки, которые ставят в холодильник, чтобы оно не скислось. Анализ проводят на 2 день. Если содержимое пробирок не изменилось, то мастита у животного нет. При наличии следующих признаков отмечается положительная реакция на заболевание:

    • появление водянистости;
    • выпадение осадка в виде хлопьев;
    • тягучесть сливок; они становятся слизистыми;

    Корову, у которой определился мастит, отделяют от стада и начинают лечение. Процесс доения проводят 2 раза в день, как животное привыкло. Частый забор молока приведёт к увеличению лактации, что вызовет осложнение заболевания. Молоко использовать для питья или для кормления теленка нельзя. Жидкость уничтожают.

    Исследования крови

    Анализ крови выявляет широкий спектр заболеваний. Забор проводят утром, перед кормлением и доением. Исследуют удельный вес крови, РОЭ, вязкость, свёртывание, химический состав.

    Данные показатели позволяют выявить какую-либо патологию, назначить правильную терапию, откорректировать рацион питания.

  • Удельный вес крови у КРС в норме – 1,040-1,059 ед. Пониженный показатель определяется у животных, страдающих истощением и анемией. Высокий удельный вес указывает на нефрит, повышенное содержание сахара в крови, лихорадку, развитие воспалительного процесса в организме.
  • Вязкость крови у быков и коров в норме – 4,6-5,2 ед. Понижение вязкости происходит при истощении и анемии. Повышенная вязкость отмечается при плеврите, перитоните, воспалении лёгких.
  • По замедленной скорости свёртывания крови определяют такие заболевания как нефрит, сибирская язва, гемофилия. У КРС – она в норме 5-6 мин. Повышенный показатель определяется при развитии крупозного воспаления лёгких, при геморрагических анемиях.
  • РОЭ по методу Панченкова в норме у взрослых животных 0,5-1,5 мм за 1 ч. У молодняка скорость оседания эритроцитов выше. При анемии, ангине, кровопятнистой болезни наблюдается повышенная РОЭ. Заниженный показатель выявляется при желтухе, гастроэнтерите. У быков невысокая РОЭ может развиваться при миоглобинурии: заболеванием страдают животные с высокой мышечной массой.
  • У здоровых животных уровень гемоглобина в крови 9,4-12,5. Снижение гемоглобина вызывает патологические процессы в организме. Коровы страдают анемией. У них появляется желтушность тканей, увеличиваются почки, печень, селезёнка. Кровь приобретает коричневый оттенок, становится водянистой.
  • Последствия сниженного гемоглобина – дистрофия мышечных тканей, в том числе сердечной мышцы. Дисфункции и дистрофия внутренних органов.

    • Определяют количество билирубина в крови. Норма для КРС составляет 0,01-0,30 мг. При повышенном билирубине диагностируется гепатоз: патологические изменения в печени.
    • Норма белка в крови у взрослых животных составляет 6,8-9,0 г%. Увеличение или снижения уровня белка приводит к нарушению обмена веществ.
    • Корова здоровая, если анализ показал уровень каротина – 0,5-4 мг%. Недостаток витамина «А» приводит к атрофии мышц, воспалению слизистых оболочек, потере зрения. Особенно важно отслеживать уровень каротина у коров в период беременности. Нехватка витамина может вызвать самопроизвольные роды.
    • Кровь берут на анализ, чтобы выяснить уровень кальция в крови. У здоровых животных его – 9,5-12,5 мг%. Снижение уровня приводит к развитию остеомаляции, рахиту у молодняка, анемии, лейкемии. Повышенное количество кальция вызывает сердечную недостаточность у коров, деформацию суставов.
    • Чтобы предотвратить заболевания опорно-двигательной, сердечнососудистой системы проверяют уровень фосфора в крови. Его норма составляет – 4.5-7,5 мг%.
    • Общий и биохимический анализ крови позволяет оценить состояние организма. При хорошем уходе за животными, сбалансированном питании, все показатели будут в норме. Отклонения указывают на развития заболеваний внутренних органов животного, нарушение обмена веществ.

      Анализ крови на лейкоз

      Лейкоз относится к хроническим опухолевым заболеваниям. Иногда он не проявляет никаких симптомов, поэтому важно провести у коров забор крови на анализ. В некоторых случаях появляются признаки лейкоцитоза. Разрастаются кроветворные и лимфоидные клетки во внутренних органах. Возбудителем лейкоза является онкорновирус. В организм здорового животного он попадает от больной особи. Лейкоз передаётся через молоко и мясо, поэтому сырьё от лейкозных коров и быков подлежит выбраковке и уничтожению.

      У животных изменяется состав крови. Происходит постоянное увеличение уровня лейкоцитов:

    • предлейкозная стадия – 14 тыс./мкл; внешних симптомов нет;
    • начальная стадия – от 15 до 40 тыс./мкл; внешние признаки заболевания не развиваются;
    • развёрнутая стадия – 40*10 9 /л; лимфатические узлы становятся больше, сердце увеличивается, пульс слабого наполнения; у коров развиваются отёки в области подгрудка и межчелюстного пространства.
    • При последней, терминальной стадии лейкоза происходит снижение уровня лейкоцитов. Часть из них преобразуется в изменённые патологические формы. Терапии против лейкемии нет.

      На взятие крови и проведение анализов существуют ГОСТы.
      Кровь для гематологического анализа берут у животных старше 2 лет. Нельзя брать
      кровь для исследования этим методом у коров в течение месяца до и после отела,
      а также у животных с больным выменем и другими воспалительными заболеваниями.
      Для исследования методом РИД кровь берут у животных не моложе 6 месяцев, не
      ранее чем через 2 недели после вакцинаций. Не берут кровь у коров в течение
      месяца до и после отела.

      Тема в разделе «Трибуна», создана пользователем Elloluv, 5 май 2016 .

      Взятие крови для исследования у сельскохозяйственных животных производится разными способами. У лошадей, крупного и мелкого рогатого скота ее берут обычно из яремной вены, расположенной над трахеей в так называемом яремном желобе. Шерсть у животного на месте взятия крови (лучше всего брать в области средней трети шеи) выстригают, кожу тщательно протирают тампонами со спиртом или смазывают настойкой йода.
      Животное коротко привязывают, голову держат за рога или недоуздок, а если нужно, использую другие способы фиксации. Затем у основания шеи животного накладывают резиновый жгут или ремень и, не завязывая его концы узлом, затягивают до тех пор, пока яремная вена не нальется кровью и не будет прощупываться в яремном желобе в виде мягкого шнура.
      Правой рукой вкалывают острую прокипяченную иглу в яремную вену по направлению снизу вверх и вперед, на глубину приблизительно 4 см. Во избежание перезаражения здоровых животных от больных и получения неверных результатов исследования крови для каждого животного должна быть отдельная прокипяченная игла.
      При удачном вколе иглы кровь струйкой вытекает через отверстие и собирается в подставленную под иглу стерильную пробирку. Если же после вкола кровь через иглу не поступает, иглу повертывают вокруг ее оси и попеременно продвигают то несколько вперед, то назад, пока не появится кровь.
      Во избежание вспенивания струйку крови надо направлять по стенкам пробирки и брать кровь примерно в количестве 2/3 объема пробирки. Затем резиновый жгут быстро ослабляют, вену зажимают пальцами левой руки выше вкола и быстрым движением вынимают иглу.
      Через иглу шприцем пропускают воду, чтобы удалить из ее канала кровь, и кладут в кипящую воду стерилизатора с целью использовать ее для взятия крови от других животных.
      Пробирку сразу же закрывают ватной пробкой, а кожу на месте вкола иглы смазывают настойкой йода. На пробирке с кровью пишут номер бирки или кличку животного и ставят ее, как и другие пробирки с кровью, на 30 минут в теплое место; затем тонкой стеклянной или металлической палочкой (отрезком проволоки) «обводят» свернувшуюся кровь по внутренним стенкам пробирки, закрывают ее пробкой и переносят в прохладное место, чтобы отстоялась кровяная сыворотка.
      Если для исследования нужна кровь несвернувшаяся (например, для РОЭ при инфекционной анемии), берут не простые пробирки, а с делениями. На дно их заранее насыпают по указанию ветеринарного врача по 15 мг (на кончике ножа) щавелевокислого натрия в порошке, берут в каждую из них кровь до верхнего деления, закрывают корковой или резиновой пробкой и сразу же, пока еще не свернулась кровь, перемешивают ее с порошком многократным осторожным опрокидыванием пробирки. Растворяясь в крови, щавелевокислый натрий предотвращает свертывание ее. Затем па пробирке ставят номер бирки или кличку животного и сразу же отправляют с нарочным на исследование в лабораторию.
      У свиней кровь берут из уха или хвоста. Для этого свинью помещают в переносную клетку-станок или па верхнюю челюсть накладывают специальные металлические щипцы или веревочную петлю, которыми и фиксируют животное. Затем, чтобы вызвать приток крови и обеспечить успешное взятие ее, ладонью руки или браншами ножниц слегка поколачивают по уху, край уха на наружной поверхности тщательно протирают тампоном со спиртом и надрезают острым скальпелем расположенную здесь веточку вены.
      При взятии крови из хвоста сначала на его конце выстригают волосы. Чтобы вызвать приток крови, слегка поколачивают по нему браншами ножниц, протирают кожу тампоном со спиртом и быстрым движением отрезают кончик хвоста длиной 1—2 см острыми ножницами или скальпелем. В том и другом случае кровь собирают в стерильную пробирку и поступают с ней, как указано ранее.