Амилаза у коров

Биохимический анализ крови (или биохимия крови собак, кошек) направлен на определение уровня глюкозы, белков и аминокислот, азотистых веществ, пигментов, липидного состава, ферментов, витаминов, белков, неорганических веществ, в т.ч. микроэлементов.

Этот анализ крови дает возможность выявить нарушения в работе печени и почек, патологии органов сердечно-сосудистой системы, является важным в диагностике анемий и дифференциальной диагностике онкологических заболеваний. Владельцам животных, при обращениях в ветеринарную клинику с заболевшим питомцем, ветеринарный врач часто предлагает сдать пробу крови (анализ) на биохимическое исследование. Результат исследования выдается на специальном бланке, где указаны норма и конкретное значение показателей у исследуемого животного. Наиболее важными биохимическими показателями крови являются: глюкоза, общий белок, общий билирубин, мочевина, креатинин, АЛТ, АСТ, ЩФ, амилаза, ГГТ. Эти данные нужны для постановки правильного диагноза и назначения лечения.

Глюкоза — вещество, из которого любая клетка организма получает энергию для жизни. Потребность организма в глюкозе увеличивается при физической и психологической нагрузках под действием гормона стресса — адреналина, во время роста, развития, выздоровления.

Для усвоения глюкозы клетками необходимо нормальное содержание инсулина — гормона поджелудочной железы. При его недостатке (сахарный диабет) глюкоза не может пройти в клетки, ее уровень в крови повышен, а клетки голодают.

Повышение уровня глюкозы (гипергликемия) отмечается при сахарном диабете (недостаточность инсулина), при физической или эмоциональной нагрузке (выброс адреналина), тиреотоксикозе (повышение функции щитовидной железы), при синдроме Кушинга (повышение уровня гормона надпочечников — кортизола) ,при заболеваниях поджелудочной железы (панкреатит, опухоль), при хронических заболеваниях печени и почек. Снижение уровня глюкозы (гипогликемия) бывает при голодании, заболеваниях поджелудочной железы (опухоль из клеток, синтезирующих инсулин), при снижении функций эндокринных желез (надпочечников, щитовидной, гипофиза), тяжелых отравления с поражением печени (мышьяком, соединениями хлора, фосфора, салицилатами, антигистаминными препаратами).

Общий белок. Белки входят в состав всех анатомических структур (мышцы, клеточные мембраны), переносят вещества по крови и в клетки, ускоряют течение биохимических реакций в организме, удерживают жидкость в кровеносных сосудах и не дают ей уходить в ткани. Белки синтезируются в печени из аминокислот пищи.

Общий белок крови состоит из двух фракций: альбумины и глобулины.

Повышение уровня белков (гиперпротеинемия) отмечается при обезвоживании (диарея, рвота), при ожогах. Снижение (гипопротеинемия) отмечается при голодании, заболеваниях кишечника, нефротическом синдроме (почечная недостаточность), при хронической печеночной недостаточности (гепатит, цирроз).

Билирубин общий — компонент желчи, состоит из двух фракций — непрямого (несвязанного), образующегося при распаде клеток крови (эритроцитов), и прямого (связанного), образующегося из непрямого в печени и выводящегося через желчные протоки в кишечник.

Является красящим веществом (пигментом), поэтому при его повышении в крови изменяется окраска кожи — желтуха. Повышение уровня билирубина (гипербилирубинемия) отмечается при повреждении печеночных клеток (гепатиты, гепатозы — паренхиматозная желтуха) и непроходимости желчных протоков (механическая желтуха).

Аспартатаминотрансфераза (АСТ) – фермент, вырабатываемый клетками сердца, печени, скелетных мышц и эритроцитами.

Повышение его уровня отмечается при повреждении печеночных клеток (гепатит, токсическое повреждение лекарствами, метастазы в печень), при тяжелой физической нагрузке, при сердечной недостаточности, при ожогах и тепловом ударе.

Гамма-глутамилтрансфераза (ГГТ) — фермент, вырабатываемый клетками печени, поджелудочной железы, щитовидной железы.

Повышение его уровня отмечается при забoлеваниях печени (гепатит, цирроз, рак), при заболеваниях поджелудочной железы (панкреатит, сахарный диабет), при гипертиреозе (гиперфункция щитовидной железы).

Щелочная фосфатаза (ЩФ) — фермент, образующийся в костной ткани, печени, кишечнике, плаценте, легких.

Повышение его уровня отмечается при беременности, при заживлении переломов, рахите, при заболеваниях костей (остеогенная саркома, метастазы рака в кости), при заболеваниях печени.

Снижение уровня ЩФ бывает при гипотиреозе (гипофункция щитовидной железы), при анемиях (малокровии), при недостатке витамина С, В12, цинка, магния.

Статью подготовил ветеринарный врач Шалдин Н.Н.

Читайте так же:

  • Бык бантенг Испокон веков быки и коровы считались самыми выгодными в домашнем содержании животными. Они были одними из первых приручены человеком, а на данный момент являются основными поставщиками […]
  • Сколько было коров у юсси За спичками Мосфильм, 1980 г. Вопрос: куда в шутку собрались уехать друзья Антти и Юсси? Ответ: в Америку. — Эй, постойте! Куда вы? — Скажи, что в Америку едем. — Юсси в Америку едет. А […]
  • Беломышечная болезнь теленка история болезни БЕЛОМЫШЕЧНАЯ БОЛЕЗНЬ , болезнь молодняка с.-х. животных, характеризующаяся нарушениями обмена веществ, функциональными и морфологич. изменениями миокарда и скелетных мышц. Чаще наблюдается […]
  • Запах ацетона изо рта у коров Ацетонемия — острое или подострое тяжелое заболевание молочных коров, сопровождающееся глубоким нарушением обмена веществ, ацидозом, накоплением в тканях и крови кетоновых тел и выделением […]
  • Что едят козы коровы и овцы Коза и овца в русских народных верованиях и представлениях Приближающийся 2015 год будет посвящен астрологическому знаку Козы, или Овцы. Сначала немного о самих этих животных, которые […]
  • Средний надой молока с одной коровы К 2025 году объемы производства молока в России должны достигнуть примерно 34 млн т, сказал «Интерфаксу» директор департамента животноводства и племенного дела Минсельхоза Харон […]

Аннотация научной статьи по животноводству и молочному делу, автор научной работы — Шайдуллин Р. Ф., Шакиров Ш. К., Софронов В. Г.

Описано влияние амидо-витаминно-минерального концентрата (АВМК) на биохимические показатели крови высокопродуктивных коров. Рассматривалось влияние различных условий кормления животных на некоторые биохимические показатели сыворотки крови.

Похожие темы научных работ по животноводству и молочному делу , автор научной работы — Шайдуллин Р. Ф., Шакиров Ш. К., Софронов В. Г.

BIOCHEMICAL PARAMETERS OF SERUM HIGH YIELDING COWS AT FEEDING AMIDO-VITAMIN-MINERAL CONCENTRATE

The effect of amido-vitamin-mineral concentrate (AVMK) on biochemical parameters of blood high yielding cows. Examined the effect of various conditions of feeding animals on some biochemical parameters of blood serum.

Текст научной работы на тему «Биохимические показатели сыворотки крови высокопродуктивных коров при скармливании амидо-витаминно-минерального концентрата»

?источники энергии и протеина в рационах крупного рогатого скота / Ш.К. Шакиров, Т. А. Макарова, Е. О. Крупин и др. // Всероссийский научно-производственный журнал Нива Татарстана. — 2011. №1-2 — С. 3235.

ИЗМЕНЕНИЕ МОЛОЧНОЙ ПРОДУКТИВНОСТИ ВЫСОКОПРОДУКТИВНЫХ КОРОВ ПРИ СКАРМЛИВАНИИ АМИДО-ВИТАМИННО-МИНЕРАЛЬНОГО

Рассматривалось влияние амидо-витаминно-минерального концентрата (АВМК) на молочную продуктивность коров, жирность и белковость молока, выход молочного жира и белка, приведена оценка экономической эффективности использования АВМК в рационах кормления коров.

CHANGE OF MILK YIELD IN HIGH YIELDING COWS FED AMIDO-VITAMIN-

Examines the impact of amido-vitamin-mineral concentrate (AVMK) on milk production of cows, fat and protein content of milk, milk fat yield and protein, give an estimate of the cost-effectiveness of using AVMK in the diets of feeding cows.

БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ СЫВОРОТКИ КРОВИ ВЫСОКОПРОДУКТИВНЫХ КОРОВ ПРИ СКАРМЛИВАНИИ АМИДО-ВИТАМИННО-МИНЕРАЛЬНОГО КОНЦЕНТРАТА Шайдуллин Р.Ф., Шакиров Ш.К.*, Софронов В.Г.

ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана»

ГНУ «Татарский Научно-исследовательский институт сельского хозяйства

Ключевые слова: животные, корм, энергия, биохимические

Key words: animals, food, energy, blood biochemistry.

В теории кормления сельскохозяйственных животных проблема энергетического и протеинового питания занимает центральное место. Для максимального проявления генетически обусловленных задатков продуктивности и хорошего усвоения корма большое значение имеет стабильность кормовой базы и полноценность кормления, поскольку молочная продуктивность на 40-50% зависит от обеспечения животных обменной энергией, на 25-30% — протеином и 20-25% минеральными веществами и витаминами. Эффективность использования энергии коррелирует с ее концентрацией в сухом веществе рациона и зависит от того, на что она расходуется [5,8].

В настоящее время в хозяйствах Республики Татарстан (РТ) для восполнения дефицита энергии в рационах высокопродуктивных коров используют различные высокоэнергетические кормовые компоненты и балансирующие добавки [9].

По мнению Г.Н. Радчиковой (2009) рационы и комбикорма, обогащенные источниками энергии — жирами — эффективны в биологическом и экономическом отношениях. В решение этой проблемы доступными источниками энергии и биологически активных веществ в условиях хозяйств РТ являются сопутствующие продукты производства рафинированного и нерафинированного масел ОАО «Казанского МЭЗ»: фуз подсолнечный или рапсовый. В этих отходах содержание кормовых единиц составляет 1,5-1,8, обменной энергии 18,2 МДж. Кроме того, фуз богат протеином, витаминами группы В и Е и другими биогенными элементами. Поэтому, учитывая их высокую энергетическую ценность, целесообразно использовать их в производстве альтернативных энергопротеиновых концентратов.

Материалы и методы. Для выполнения данной работы в условиях молочно-товарной фермы ЗАО «Бирюли» Высокогорского района РТ был проведён научно-хозяйственный опыт. Для опыта были отобраны 60 дойных коров голштинизированной черно-пестрой породы, разделенных по принципу пар-аналогов на 3 группы по 20 голов в каждой, со среднесуточной продуктивностью 22-24кг. Продолжительность опыта составила 116 дней.

Согласно схеме опыта животные первой (контрольной) группы получали сбалансированный хозяйственный рацион, состоящий из сенажа вико-овсяного, соломы ячменной и комбикорма. В рационы коров второй и третьей опытных групп были включены различные эксперементальные АВМК: с фузом и с маслосеменами рапса в количестве 12% от зерновой части, не нарушая их сбалансированности.

Результаты исследования. Исследованиями установлено, что различные условия кормления животных оказали определенное влияние на некоторые биохимические показатели сыворотки крови (таблица 1).

1. Биохимические показатели крови

Показатель Ед. изм. Г руппы

Подготовительный период (п=5)

Общий белок г/л 82,00±2,98 84,00±3,07 80,00±2,99

Альбумины г/л 43,50±2,22 45,20±2,36 41,00±2,41

Мочевина ммоль/л 6,05±0,99 5,61±0,87 6,11±1,03

Холестерин ммоль/л 5,90±1,09 4,88±1,01 6,24±1,13

Триглицериды ммоль/л 0,14±0,04 0,13±0,02 0,12±0,02

Г люкоза ммоль/л 2,35±0,19 2,40±0,22 2,28±0,16

Общий кальций ммоль/л 2,36±0,08 2,42±0,03 2,55±0,07

Фосфор неорганический ммоль/л 2,25±0,16 2,37±0,09 2,17±0,11

Амилаза Е/л 30,00±3,15 28,80±2,89 30,40±3,21

Щелочная фосфатаза Е/л 90,50±29,13 93,80±30,37 92,20±32,06

АсАТ Е/л 100,50±6,21 104,40±6,89 96,00±5,65

АлАТ Е/л 35,00±2,89 32,00±2,76 41,00±3,05

Опытный период (п=5)

Общий белок г/л 75,70±2,83 79,20±3,02 76,40±3,03

Альбумины г/л 35,60±2,15 38,60±2,63 41,00±2,78

Мочевина ммоль/л 5,80±1,05 5,37±0,95 5,12±0,98

Холестерин ммоль/л 5,00±1,19 5,54±1,25 5,44±1,20

Триглицериды ммоль/л 0,14±0,02 0,21±0,10 0,16±0,05

Г люкоза ммоль/л 2,06±0,12 2,17±0,16 2,17±0,21

Общий кальций ммоль/л 2,22±0,23 2,15±0,09 2,19±0,15

Фосфор неорганический ммоль/л 1,40±0,18 1,35±0,15 1,47±0,22

Амилаза Е/л 31,3±3,63 32,80±3,48 38,40±4,01

Щелочная фосфатаза Е/л 90,7±31,06 94,2±32,29 95,4±35,67

АсАТ Е/л 85,80±5,39 88,80±5,91 97,40±6,13

АлАТ Е/л 33,70±2,58 36,60±2,48 38,20±2,99

Важной составной частью любого живого организма являются белки. Установление количества белка в плазме или сыворотке крови имеет не только диагностическое, но и важное прогностическое значение. При недостаточном поступлении белков в организм отмечается задержка роста и развития, снижение продуктивности. [2].

Общий белок характеризует уровень протеинового питания, концентрация его в сыворотки крови подопытных животных всех трех групп соответствовали значениям физиологической нормы, как в подготовительный (80,00. 84,00 г/л), так и в опытный периоды (75,70. 79,20 г/л).

Альбумины, выступая в качестве пластического материала, обуславливают возможности для синтеза мышечной ткани и молочного белка животных.

Показатель альбумина в сыворотке крови у животных всех групп в подготовительный период находился в пределах нормы. Однако, в опытный период у животных первой и второй групп произошло снижение содержания альбуминов в сыворотке крови на 7,9 и 6,6% соответственно (Р>0,05). У животных третьей опытной группы уровень альбуминов в сыворотке крови был относительно стабилен, что, возможно, обусловлено большей продуктивностью животных этой группы.

Мочевина является индикатором степени использования и биологической ценности переваренного протеина, это одна из фракций остаточного азота крови, составляющая около 50% всего его количества. Она является конечным продуктом азотистого обмена. Большая ее часть выделяется с мочой, а меньшая возвращается в рубец со слюной или через рубцовую стенку. Показатели содержания мочевины в сыворотке крови коров в подготовительный период находились в пределах физиологической нормы. За период опыта у животных всех трех групп наблюдалось снижение уровня мочевины, которое было наиболее выраженным у коров третьей группы и составило на 0,99%, против 0,24 и 0,25% у животных первой и второй групп соответственно. [4].

Следовательно, установленная в эксперименте динамика в крови общего белка и альбуминов, по нашему мнению, является следствием усиления метаболических процессов (компенсаторный механизм при высокой продуктивности) и не говорит о какой-либо патологии со стороны организма животного, а снижение уровня азота мочевины в сыворотке крови указывает на более эффективное усвоение азота рациона в целом.

Углеводы играют важную роль в энергетическом балансе организма, превышая в этом долю вместе взятых белков и жиров вдвое.

О характере углеводно-жирового обмена в организме животных можно судить по концентрации в сыворотке крови холестерина, триглицеридов, глюкозы и активности фермента а-амилазы.

Основным источником энергии в организме лактирующих коров является глюкоза, которая является главным предшественником лактозы. Глюкоза всасывается в кровь и поступает в ткани, избыток ее откладывается в печени в виде гликогена, в мышцах и др. тканях. [1,4,6].

Фоновые значения концентрации глюкозы в крови животных во всех группах были в пределах нижней границы физиологической нормы и колебалась от 2,28 до 2,40 ммоль/л. В опытный период ее концентрация имела тенденцию к снижению в сыворотке крови животных всех групп на 12,30; 9,53; 4,66% и составила соответственно 2,06; 2,17; 2,17 ммоль/л. (Р>0,05)

Богатым источником энергии являются и липиды. При окислении в организме энергетическая ценность жира составляет 9,0 ккал/г (37,7 кДж/г). Липиды входят в состав клеточных мембран, выполняя структурную функцию и обусловливая степень проницаемости этих

образований для других соединений, а холестерин входит в состав липопротеинов тканей и крови. [4].

Исследованиями установлено, что концентрация холестерина в сыворотке крови животных всех групп в подготовительный и опытный периоды составляла (4,00.6,00 ммоль/л), в то время как в опытный период наблюдалось незначительное снижение уровня холестерина (Р>0,05).

Концентрация триглицеридов имеет тенденцию к увеличению в сыворотке крови животных второй и третьей опытных групп на 0,08 и 0,04 ммоль/л соответственно, при неизменном уровне у животных в контрольной группе.

Активность а-амилазы крови животных третьей группы в подготовительный период была несколько выше (на 1,3.5,5 Е/л). В дальнейшем подобная тенденция сохранилась, но имела более выраженный характер. В опытный период уровень а-амилазы в сыворотке крови в наибольшей степени повысился у коров третьей группы и составил 38,40 ммоль/л, что на 26,32% выше по сравнению с фоновыми значениями на 17,1 и 22,7%.(Р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана»

Ключевые слова: лингвистика, модальность, характеристика

модальности, объективная модальность, субъективная модальность.

Key words: linguistics, modality, description of modality, objectival of modality, subjective of modality.

Изучение модальности в лингвистике имеет давнюю традицию, так как модальность является одним из самых сложных и противоречивых понятий, имеющих множество различных трактовок. В связи с разнообразием подходов к рассматриваемому явлению, тема настоящей

Код Наименование услуг Цена, руб. Доступность экспресс Ед. измер. Материалы Заказать
109 Амилаза 150 p (Время исполнения 24 часа)
200 p (Время исполнения 1 час)
Все филиалы лаборатории 1 исслед. S C

У животных представлена только альфа-амилаза. Амилаза гидролизирует сложные углеводы. Поджелудочная железа, печень, тонкий кишечник являются источником амилазы сыворотки.

У здорового животного источником амилазы сыворотки является внепанкреатические источники и это количество обычно не превышает 1000 Ед/л.

Липаза и амилаза инактивируются в почках и выводятся из организма с мочой (при нарушении выделительной функции почек эти ферменты дольше находятся в кровотоке и их активность повышается)

Отмечена породная предрасположенность к острому панкреатиту:

• Собаки среднего возраста таких пород как миниатюрный шнауцер, карликовый пудель и кокер-спаниель

• Кошки среднего возраста сиамской породы

Натощак, обязательно перед проведением диагностических или лечебных процедур. Кровь берется в сухую, чистую пробирку (одноразовую) (пробирка с белой или красной крышкой). Используют иглу с большим просветом (без шприца, исключения только при трудных венах). Кровь должна стекать по стенке пробирки. НЕ ТРЯСТИ! НЕ ВСПЕНИВАТЬ! 1. После взятия пробы оставьте пробирку при комнатной температуре до момента, когда кровь свернется (это займет около 10 – 15 мин) 2. Сыворотка или плазма должны быть отделены от крови как можно быстрее. Если есть возможность, отцентрифугируйте на месте. Перенесите сывортку в пробирку Эппендорф, поместите ее в холодильник или оставьте при комнатной температуре. Обязательное условие – исключить воздействие солнечного света (на свету непрямой билирубин очень быстро разлагается) 3. Хранить цельную кровь после образования сгустка нужно обязательно в холодильнике.

Повышено: Панкреатит, почечная недостаточность (острая и хроническая), отравления, сахарный диабет, острый гепатит, первичный биллиарный цирроз печени, заворот желудка и кишечника, перитонит. Активность амилазы сыворотки более 5000 Ед/л высоко специфична для острого панкреатита Породные особенности: некоторые породы собак имеют более низкие показатели нормы (например, хаски) Активность амилазы лучше интерпретировать в свете активности липазы. У собак с панкреатитом активность амилазы не коррелирует с липазой, пока активность последней не превысит 800 Ед/л Важно. Активность амилазы у кошек с острым панкреатитом понижена и поэтому не используется как индикатор болезни! Интерференция: липемия может искажать результат измерения амилазы (и завышать и занижать)

Срок исполнения

1 рабочий день (плюс 1-2 для регионов)

Исследуемый материал

Метод определения

Кинетика, ферментативный, реакция гидролиза с 2-хлоро-4- нитрофенилмальтотреозидом (CNP-G3)

Амилаза представляет собой фермент, синтезируемый в поджелудочной железе, слюнных железах (за исключением жвачных и плотоядных), двенадцатиперстной кишке, почках, легких и селезенке. У собак и кошек амилаза присутствует в поджелудочной железе в очень высокой концентрации. Фермент секретируется в активной форме и гидролизует сложные углеводы (крахмал и гликоген) с образованием мальтозы и глюкозы. В норме слизистая оболочка двенадцатиперстной кишки является наиболее вероятным источником амилазы в сыворотке крови. Период полувыведения фермента из крови здоровых собак колеблется от одного до пяти часов.
Основным продуктом расщепления углеводов под действием амилазы слюнных желез (птиалина) являются декстрины (со средней длиной цепи 8–10 остатков глюкозы). Под действием птиалина также образуется небольшое количество мальтозы и мальтотриозы. Оптимальный рН для амилазы составляет 6,7, поэтому кислый желудочный сок подавляет действие фермента. Короткое время нахождения пищи в ротовой полости, невысокая активность амилазы в слюне и пропитывание пищевого комка желудочным соком делают работу фермента непродолжительной и малоэффективной.
Экскреция амилазы из организма осуществляется почками. Попадая в ультрафильтрат через почечные клубочки, фермент частично резорбируется и инактивируется эпителием почечных канальцев, незначительная активность амилазы определяется в моче. Клетки Купфера в печени также способны к резорбции и инактивации небольшого количества амилазы.
Снижение скорости клубочковой фильтрации (СКФ) приводит к повышению концентрации амилазы в сыворотке крови. У собак и кошек с заболеваниями почек наблюдается увеличение активности фермента в 2,5 раза и выше. В результате преренальной азотемии увеличение активности сывороточной амилазы может произойти в большей степени. При почечной недостаточности наблюдается повышение активности амилазы не только в крови, но и в моче в результате снижения канальцевой реабсорбции.
Увеличение сывороточной активности фермента может отмечаться при макроамилаземии, когда амилаза в крови образует соединения с белками плазмы, чаще с антителами. Клубочковая фильтрация этих комплексов затруднена ввиду их размеров. Макроамилаземия часто присутствует у собак и птиц при панкреатите, но редко наблюдается у кошек. Макроамилаземия составляет от 5 до 62% от общей амилазы и имеет повышенную концентрацию в сыворотке крови собак с заболеванием почек и/или при снижении скорости клубочковой фильтрации и, следовательно, вносит свой вклад в гиперамилаземию, выявляемую при заболевании почек.
Дегенерация ацинарных клеток или обструкция протоков поджелудочной железы является причиной попадания амилазы в кровеносное русло. Чем выше активность амилазы (выше нормы в 7–10 раз), тем больше вероятность острого заболевания поджелудочной железы. Повышение активности этого фермента в крови у собак чаще связано с панкреатитом, определение его сывороточной активности используется в качестве скринингового теста. Повышение активности амилазы в сыворотке крови в 7–10 раз и более при отсутствии почечной недостаточности, как правило, предполагает развитие панкреатита. После острого панкреатита уровень амилазы повышается, достигая пика в течение 12–48 часов и возвращаясь к нормальным значениям в течение 8–14 дней. Увеличение уровня фермента в 3–4 раза наблюдается при заболеваниях других органов, производящих амилазу, а также при развитии сахарного диабета, лимфосаркомы, гемангиосаркомы и снижении СКФ. Однако уровень активности амилазы не отражает тяжести поражения поджелудочной железы. У собак в некоторых случаях острого панкреатита активность амилазы в сыворотке крови остается в пределах нормальных значений. Таким образом, чувствительность и специфичность метода определения активности амилазы в диагностике панкреатита у собак низкие и составляют от 63 до 77%, соответственно.
Исследование активности сывороточной амилазы у кошек считается малоинформативным, особенно в диагностике острого поражения поджелудочной железы. Уровень фермента, как правило, остается в пределах нормы. При подозрении на панкреатит одновременно следует определить уровень активности панкреатической липазы в крови.

Для получения более точных результатов животные перед исследованием должны находиться на голодной диете не менее 12 часов.
При физиологической или патологической липемии сыворотки возможно ингибирование активности амилазы.
Образец стабилен одну неделю при комнатной температуре, один месяц ? при хранении в холодильнике (+2С…+8С) и шесть месяцев сохраняет стабильность при замораживании (-20С).

Результаты исследования содержат информацию исключительно для врачей. Диагноз ставится на основании комплексной оценки различных показателей, дополнительных сведений и зависит от методов диагностики.

Единицы измерения: Ед/л.

Референсные значения:
Собаки: 350–2000 Ед/л.
Кошки: 350–2000 Ед/л.
Лошади: 9–34 Ед/л.
КРС: 12–107 Ед/л.

Если у пациента установлено повышение активности амилазы в крови, необходимо провести дополнительные клинические обследования с целью исключения патологий печени, кишечника или состояний и заболеваний, снижающих СКФ.

Повышение показателя:
Снижение СКФ.
Панкреатит.
Тяжелая дегидратация.
Заболевания почек.
Обструкция мочевыводящих путей.
Заболевания/разрыв кишечника.
Заболевания печени.
Прием лекарственных препаратов (глюкокортикоидов).

Понижение показателя:
Не имеет клинической значимости.

Введение

Печень, являясь важным центром поддержания гомеостаза, играет важную роль в процессах адаптации и компенсации нарушенных функций, зачастую это реализуется в виде обеспечения относительно постоянной концентрации некоторых гуморальных факторов в крови [1].

Поскольку гепатопатии имеют мультифакторную природу, они достаточно широко распространены в хозяйствах и наносят серьёзный экономический ущерб, складывающийся из снижения продуктивности скота, рождения слабого, зачастую нежизнеспособного молодняка и ранней выбраковки животных [3].

Одной из важнейших проблем животноводства на современном этапе является низкий адаптивный потенциал высокопродуктивного импортного скота [2; 3]. Интенсификация производства, нарушение технологии кормления, содержания и эксплуатации такого поголовья очень быстро приводят к снижению уровня компенсаторно-восстановительных процессов организма, потере здоровья и невозможности получить здоровое потомство [4]. Как правило, реализация патологического процесса в таких условиях сопровождается широким спектром гомеостатических отклонений, приобретающих форму определённого метаболического синдрома, обусловленного функциональной слабостью печени. При этом возникают предпосылки для развития полиморбидного состояния с поражением эндокринного аппарата, сердечно-сосудистой, половой и прочих систем [5].

Цель исследования: выявление особенностей клинического, гематологического и биохимического проявления патологии печени у высокопродуктивного крупного рогатого скота, а также его влияния на репродуктивную функцию.

Материалы и методы

Исследования проведены в 2011-2013 гг. на поголовье крупного рогатого скота голштино-фризской породы (европейской и североамериканской селекции), принадлежащих ООО «Группа компаний «Зелёная долина» Белгородской области.

Клинические исследования животных проводили по общепринятой схеме. Материал для лабораторной диагностики во всех случаях получали до кормления. Исследования крови проводились не позже 5-6 часов после отбора материала и включали:

— общий (клинический) анализ крови, в том числе выведение лейкоцитарной формулы путем подсчёта лейкоцитов в мазках, окрашенных по Лейшману, с использованием общепринятых методик;

— биохимический анализ сыворотки крови с определением общего белка и его фракций, альбумин-глобулинового соотношения и глобулинового индекса, коллоидной стойкости сывороточных белков; уровень ферментемии контролировали активностью трансаминаз (АЛТ, АСТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), гаммаглутамилтранспептидазы (ГГТП) и альфа-амилазы. Определяли концентрацию креатинина, мочевины, мочевой кислоты, билирубина, глюкозы, триацилглицеридов, холестерола, каротина. Состояние минерального и водно-электролитного обмена характеризовали концентрацией общего кальция, неорганического фосфора, магния, калия, натрия, хлоридов, железа, меди и цинка.

Все исследования проведены с использованием унифицированных методик.

Результаты и их обсуждение

Комплексом клинических исследований стельных коров в период сухостоя были выявлены животные с признаками нарушений обмена и патологии печени. Установлено, что у 100% животных наблюдалось тахипноэ и тахикардия, у 60% — глухость сердечных тонов, у 90% — гипотония преджелудков, у 50% — увеличение перкуторных границ печени, у 70% — признаки деминерализации костной ткани, что сопровождалось размягчением последних хвостовых позвонков и поперечных отростков поясничных позвонков. У 60% животных шерсть тусклая, ломкая, плохо фиксируется в коже.

Ввиду того, что подобная симптоматика не является строго патогномоничной, а участие печени в метаболизме характеризуется теснейшим переплетением биохимических и просто химических процессов, для выяснения степени обменных нарушений у обследуемого поголовья отбирали кровь с последующим её гематологическим и биохимическим исследованием.

В результате установлено: у 90% животных обнаружены признаки депрессии эритроцитарного ростка кроветворения, что сопровождалось снижением числа эритроцитов и клеточного коэффициента, при этом признаки анемии преимущественно носили черты гиперхромной с появлением в крови полихроматофилов (табл. 1). Подобные изменения характерны для гипопластических состояний, обусловленных главным образом нарушением обмена железа и гемопротеидов. Последнее подтверждалось сидеропенией и низкой железосвязывающей способностью сыворотки крови, которая обусловлена активностью трансферрина.

Таблица 1 — Гематологические показатели стельных коров (n=80)

Производитель:

Набор ветеринарных диагностических реагентов для определения активности альфа-амилазы в крови животных.

Альфа-амилаза — гидролитический фермент, расщепляющий сложные углеводы до мальтозы и глюкозы. Различают амилазу слюны и панкреатическую амилазу. Однако у животных значительная часть амилазной активности обусловлена слизистой тонкого кишечника и другими внепанкреатическими источниками. У собак и кошек амилаза не выделяется с мочой, а реабсорбируется и метаболизируется в эпителии почечных канальцев. Поэтому, определение альфа-амилазы в моче у животных не проводится. Уровень амилазы у животных может повышаться более чем в 3 раза при остром панкреатите в первые 12-48 часов, а также при почечной недостаточности.

Повышение уровня альфа-амилазы в сыворотке крови отмечается при панкреатитах, кистах поджелудочной железы, закупорке протока поджелудочной железы, раке поджелудочной железы, а также иногда при почечной недостаточности, отравлениях, сахарном диабете, первичном билиарном циррозе, непроходимости и заворотах ЖКТ, электролитных нарушениях.

Понижение активности отмечается при некрозе поджелудочной железы (терминальные стадии), тиреотоксикозе, отравлениях мышьяком, барбитуратами, после применения антикоагулянтов.

Единицы измерения в лаборатории: Ед/л.

Референсные значения: собака – 269,5-1462,4 Ед/л, кошка – 371,3-1192,6 Ед/л, крупный рогатый скот – 405,0-1337,0 Ед/л, свинья – 43,5-88,0 Ед/л.

Характеристики

• Линейность в диапазоне от 5 до 2000 Ед/л.
• Отклонение от линейности не более 5%.
• Чувствительность — не более 5 Ед/л.
• Коэффициент вариации — не более 5%.

Стоимость анализа

На полуавтоматических биохимических анализаторах (URIT-800 Vet, BS 3000M, Clima MC-15) средняя по 25 показателям стоимость анализа около 9 рублей.

На автоматических анализаторах (DIRUI CS-T240, iMagic-V7) — 7 рублей.

Фасовка

Возможны два вида фасовки:

  1. Биреагент, 170 мл/340 измерений, в состав набора входит 2 реагента: (2 флакона по 68 мл + 2 флакона по 17 мл);
  2. Биреагент, 510 мл/1020 измерений, в состав набора входит 2 реагента (6 флаконов по 68 мл + 6 флаконов по 17 мл).

Доставка

Транспортирование и хранение наборов должно производиться при температуре 2-8?С в упаковке предприятия-изготовителя в течение всего срока годности. Допускается транспортирование и хранение наборов при температуре до 25?С не более 5 суток. Замораживание компонентов набора не допускается.

Срок годности набора – 18 месяцев.

Реагенты 1 и 2 после вскрытия флаконов можно хранить при температуре 2-8?С в течение всего срока годности набора при условии до-статочной герметичности флаконов и отсутствии загрязнения.

Рабочий реагент можно хранить в темном месте при температуре 2-8°С не более 6 месяцев или при комнатной температуре (15-25?С) не более месяца при условии достаточной герметичности флаконов и отсутствии загрязнения.

Для получения надежных результатов необходимо строгое соблюдение инструкции по применению набора.

Белок
Альбумин
Глобулин

АЛТ — Аланинаминотрансфераза
АСТ — Аспартатаминотрансфераза
ГГА — Гамма-глутамилтранспептидаза
ЛДГ — Лактатдегидрогеназа
СДГ — Сорбитолдегидрогеназа

Гематологические показатели у различных видов животных

Средний объем эритроцита

Среднее содержание гемоглобина в эритроците*

Средняя концентрация гемоглобина в эритроците**